Hongos anamorfos asociados a restos vegetales del Parque Estatal “Agua Blanca”, Macuspana, Tabasco, México

HONGOS ANAMORFOS ASOCIADOS A RESTOS VEGETALES DEL PARQUE ESTATAL “AGUA BLANCA”, MACUSPANA, TABASCO, MÉXICO

Karen Martínez-Rivera1,3, Gabriela Heredia2, Edmundo Rosique-Gil1
y Silvia Cappello1

1Universidad Juárez Autónoma de Tabasco, División Académica de Ciencias Biológicas, Laboratorio de Micología, Herbario UJAT, km 5 carretera Villahermosa - Cárdenas entronque a Bosques de Saloya, 86039 Villahermosa, Tabasco, México.

2Instituto de Ecología, A.C., km 2.5 antigua carretera a Coatepec 351, Congregación El Haya, 91070 Xalapa, Veracruz, México.

3Autor para la correspondencia: k_martinezrivera@hotmail.com

RESUMEN

La riqueza fúngica de las áreas protegidas del estado de Tabasco ha sido pobremente estudiada. En su mayoría, las especies saprobias microscópicas aún se desconocen. La presente contribución tiene como objetivo documentar la composición de hongos anamorfos que proliferan en los restos vegetales de la selva del Parque Estatal “Agua Blanca”. En total se presentan 40 taxones, entre los cuales se incluyen 15 que no se conocían para México y 25 para el estado de Tabasco. De todos los registros nuevos a nivel nacional, junto con su descripción morfológica, se anexan ilustraciones, información sobre la distribución geográfica conocida y observaciones sobre sus caracteres de interés taxonómico.

Palabras clave: hongos microscópicos, hongos saprobios, hongos tropicales, restos vegetales.

ABSTRACT

Fungal diversity of protected areas in the state of Tabasco has been poorly studied. Most microscopic saprophytic species are not yet known. This contribution aims to increase our knowledge of the litter-inhabiting anamorphic fungi from the rain forest of the “Agua Blanca” state park. An account of 40 taxa is included, 15 of them had not been reported from Mexico before, and 25 are new records for the Tabasco state. For all the new national records, morphologic description, illustrations, geographical distribution and observations on their taxonomic characters are included.

Key words: microfungi, plant debris, saprobe fungi, tropical fungi.

INTRODUCCIÓN

Más de 60% de las especies del reino Fungi son microscópicas, representando un grupo con una amplia distribución tanto en hábitats naturales como en los ambientes modificados por el hombre (Heredia et al., 2008). Entre ellas destacan los hongos anamorfos por tener patrones de distribución extendidos y por ser abundantes tanto en ambientes naturales como en los domésticos, donde es frecuente encontrarlos como parásitos o saprobios. La mayoría de los estudios sobre estos hongos se han enfocado en los patógenos. Por el contrario, se conoce muy poco sobre la diversidad de las especies saprobias, a pesar de su alto potencial en la biotecnología y su participación en importantes procesos tales como la descomposición de restos vegetales y el reciclaje de nutrimentos (Heredia et al., 2008).

Si bien en la última década se han incrementado las publicaciones sobre la descripción de nuevas especies y registros de anamorfos, para la mayoría de las entidades de la República Mexicana aún no se cuenta con información y mucho menos con colecciones de referencia. Con respecto al estado de Tabasco, Rosique y Cappello (en prensa) mencionan que se han reportado 467 especies de macromicetos y micromicetos, entre las que están 128 taxones de micromicetos anamorfos, correspondientes a organismos saprobios asociados a restos vegetales (Heredia et al., 2006; Becerra et al., 2007, 2008 y 2011).

El estado de Tabasco presenta una considerable riqueza vegetal, por lo cual se puede esperar que exista una gran diversidad de especies de hongos anamorfos en sus ecosistemas; es por eso que es necesaria la realización de proyectos a largo plazo, encaminados a la exploración de las áreas conservadas y protegidas del estado. Tal es el caso del Parque Estatal “Agua Blanca”, localizado en el ejido Las Palomas, del municipio de Macuspana, en la porción oeste y noroeste de la Región Sierra de Tabasco (17°37' N; 92°29' O). El parque abarca una superficie de 2025 hectáreas (Fig. 1) (Castillo y Zavala, 1996; Anónimo, 2009), con una altitud de 100 a 200 m. La vegetación dominante es selva mediana perennifolia; se han registrado 1950 especies de plantas vasculares pertenecientes a 150 familias (Castillo, 1995), que representan 49% de la diversidad vegetal del estado.

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Fig. 1. Ubicación geográfica del Parque Estatal Agua Blanca, Macuspana, Tabasco.

El objetivo de este estudio es contribuir al conocimiento de los hongos anamorfos saprobios del estado de Tabasco, mediante la descripción y documentación de especies recolectadas en restos vegetales de la selva del Parque Estatal “Agua Blanca”.

MÉTODO

En el área de selva mediana del parque se recolectaron del suelo restos vegetales en diferentes estados de descomposición. En el laboratorio, el material se colocó en cámaras húmedas a temperatura ambiente. A partir del segundo día de incubación las muestras se revisaron diariamente mediante un microscopio estereoscópico (Zeiss Stemi DV4). Se hicieron preparaciones permanentes con alcohol polivinílico y semipermanentes con lactofenol. El análisis de la morfología, de la conidiogénesis y la obtención de las medidas de las estructuras se efectuaron mediante microscopía de campo claro (Carl Zeiss Axiostar Plus) y de contraste de fases (Nikon-Eclipse 80i). La identificación de las especies se llevó a cabo con la consulta de bibliografía especializada, además de los textos básicos sobre hongos anamorfos (Ellis, 1971, 1976; Carmichael et al., 1980; Barnett y Hunter, 1987; Matsushima, 1971, 1983, 1996 y 2001). La información sobre la distribución geográfica de los hongos se obtuvo mediante la consulta de bibliografía especializada y la base de datos CYBERNOME (www.cybertruffle.org.uk/cybernome/eng). El material de referencia consistente en preparaciones microscópicas se encuentra depositado en la Sección de Micología del Herbario de la Universidad Juárez Autónoma de Tabasco (UJAT).

RESULTADOS

Se identificaron 40 especies, de las cuales 15 son nuevos registros para México y 25 para el estado de Tabasco. Dado que todas las especies estudiadas han sido recolectadas en diferentes regiones tropicales del mundo, es factible suponer que su distribución es pantropical. De acuerdo con la búsqueda bibliográfica y la consulta de la base de datos CYBERNOME, Dactylaria filiformis, Mycoleptodiscus taiwanensis y Vermiculariopsiella parvula no habían sido vueltas a registrar desde su descripción original. Así mismo, para Dactylaria uniseptata, Melanocephala cupulifera, Mycoleptodiscus taiwanensis y Vermiculariopsiella parvula no se encontraron registros de colectas previas para la zona neotropical por lo que con la presente contribución se extiende el conocimiento de su distribución geográfica.

Descripción morfológica de las especies que representan nuevos registros para México

Atrosetaphiale flagelliformis Matsush., Matsush. Mycol. Mem. 8: 14. 1995. Fig. 2.

Colonias dispersas, pardas oscuras. Conidióforos macronematosos, mononematosos, solitarios o gregarios, erectos, rectos, o ligeramente curvos, simples, lisos, pardos oscuros, 73.8-117 × 4.1-5 µm. Células conidiógenas enteroblásticas, fialídicas, ampuliformes, integradas en el ápice y agrupadas en verticilos de 2-4 fiálides, dispuestas en intervalos a lo largo de los conidióforos, lisas, pardas pálidas, 9.4-14 × 4.2-5 µm. Conidios filiformes, sin septos, cilíndrico-fusiformes hacia la base y flageliformes hacia el ápice, unicelulares, hialinos, agregados en mucílago, 12-30 × 1-1.5 µm.

Material estudiado. Hojas en descomposición de Aechmea bracteata (Bromeliaceae). CHM-UJAT-01. Col. K. Martínez-Rivera, 11/11/2010.

Observaciones. La forma y dimensiones del ejemplar estudiado coinciden con las del material tipo de la especie.

Distribución. Hasta la fecha Atrosetaphiale es un género monoespecífico, el material tipo fue aislado de pecíolos de palma recolectados en la región amazónica del Perú (Matsushima, 1995). La especie también ha sido recolectada en Brasil (Castañeda-Ruiz et al., 2003; Barbosa et al., 2009).

Beltraniopsis ramosa R.F. Castañeda, Rev. Jardín Bot. Nac. 6(1): 53. 1985. Figs. 3a y 3b.

Colonias dispersas, pilosas, pardas claras. Conidióforos macronematosos, setiformes, con 1-3 ramificaciones, erectos, ápices afilados, lisos, pardos, 250 × 3-5 µm. Células conidiógenas poliblásticas, integradas o discretas, denticuladas, lisas, pardas pálidas, 9-13 × 5-5.5 µm. Células separadoras ovoides, lisas, hialinas. Conidios bicónicos, rostrados hacia el ápice, base redondeada, oliváceos con una banda transversal hialina, 22-26 × 5-6 µm.

Material estudiado. Hojas en descomposición. CHM-UJAT-03. Col. K. Martínez-Rivera, 11/02/2011.

Observaciones. Castañeda-Ruiz y Arnold (1985) mencionan la presencia de conidióforos con paredes verrugosas, carácter que no se observó en el material examinado. Sin embargo, el resto de la morfología coincide con la descripción de B. ramosa.

Distribución. Existen registros para Brasil (Gusmão y Grandi, 1996; Gusmão et al., 2001), Cuba (Castañeda-Ruiz y Arnold, 1985; Delgado-Rodríguez y Mena-Portales, 2004a; Delgado-Rodríguez et al., 2002) y Venezuela (Castañeda-Ruiz, 2009).

Berkleasmium sinense Joanne E. Taylor, K.D. Hyde & E.B.G. Jones, Fungal Diversity 12: 302. 2003. Fig. 4.

Conidiomas de tipo esporodoquio, punctiformes, pardos oscuros, brillosos. Conidióforos micronematosos, simples o ramificados, hialinos, 2-2.5 µm. Células conidiógenas holoblásticas, integradas, terminales, hialinas, cilíndricas. Conidios elipsoidales u obovoides, muriformes, lisos, ligeramente constreñidos en los septos, pardos oscuros en el ápice, más claros hacia la base, 30-51 × 21-30 µm.

Material estudiado. Ramas en descomposición. CHM-UJAT-04. Col. K. Martínez-Rivera, 11/02/2011.

Observaciones. Las medidas del ejemplar estudiado concuerdan con las del material tipo reportado por Taylor y Hyde (2003).

Distribución. Esta especie ha sido recolectada en sitios tan distantes como Argentina (Capdet y Romero, 2010) y China (Taylor y Hyde, 2003).

Clonostachys compactiuscula (Sacc.) D. Hawksw. & W. Gams, Trans. Br. Mycol. Soc. 64(1): 90. 1975. Figs. 5a y 5b.

Colonias gregarias, dispersas, algodonosas, mucilaginosas, blancas. Conidióforos macronematosos, mononematosos, flexuosos, en grupos, con el ápice peniciliforme, septados, lisos, hialinos. Células conidiógenas monofialídicas, 2-4, determinadas, lisas, hialinas, 10.5-18 × 2.5-3 μm. Conidios sin septos, cilíndricos, hialinos, agrupados en columnas mucilaginosas, 8-11 × 1-2 μm.

Material estudiado. En hojas en descomposición. CHM-UJAT-05. Col. K. Martínez-Rivera, 11/02/2011.

Observaciones. La presencia de conidióforos de tipo Verticillium y la disposición de los conidios en largas columnas mucilaginosas, claramente distinguen a esta especie.

Distribución. Muy probablemente se trata de un hongo cosmopolita asociada a suelos y restos vegetales; existen registros para Argentina (Arambarri et al., 1987), Brasil (Barbosa et al., 2009), Cuba (Mercado-Sierra y Mena-Portales, 1995), Inglaterra (Hawksworth y Punithalingam, 1975) y Venezuela (Castañeda-Ruiz et al., 2003).

Dactylaria filiformis R.F. Castañeda, Guarro & Cano, Mycotaxon 58: 254. 1996. Figs. 6a y 6b.

Colonias efusas, pilosas, pardas oscuras. Conidióforos macronematosos, mononematosos, rectos o flexuosos, pardos en la base, más claros hacia el ápice, 10-25 × 3-3.5 μm. Células conidiógenas poliblásticas, terminales, simpodiales, subhialinas, denticuladas. Conidios filiformes, sin septos, hialinos, 15-20 × 1 μm.

Material estudiado. Hojas en descomposición. CHM-UJAT-07. Col. K. Martínez-Rivera, 11/02/2011.

Observaciones. Dactylaria filiformis es muy parecida a D. scolecospora (Kirk, 1983); se diferencian en que los conidios de la última son más largos y delgados (30-45 × 0.5-1).

Distribución. No se encontró algún registro posterior a la descripción de la especie, la cual fue detectada en material recolectado en Cuba (Castañeda-Ruiz et al., 1996).

Dactylaria hemibeltranioidea R.F. Castañeda & W.B. Kendr., Univ. Waterloo Biol. Ser. 35: 27. 1991. Fig. 7.

Colonias efusas, pilosas, pardas oscuras. Conidióforos macronematosos, mononematosos, solitarios, erectos, rectos o flexuosos, simples, pardos en la base, más claros hacia el ápice, 40-75 × 3-3.5 μm. Células conidiógenas poliblásticas, terminales, integradas, denticuladas. Conidios cilíndricos, hialinos, 7-9 × 2-2.3 μm.

Material estudiado. Ramas en descomposición. CHM-UJAT-08. Col. K. Martínez-Rivera, 11/11/2010.

Observaciones. La longitud de los conidios del material examinado es menor a la del ejemplar tipo (12-20.5 μm), reportada por Castañeda-Ruiz y Kendrick (1991). Sin embargo, debido a que el resto de las características concuerdan con la especie, se decidió ubicar el material como D. hemibeltranioidea y ampliar el intervalo de las dimensiones de la longitud del conidio.

Distribución. Desde la descripción original de la especie en Cuba (Castañeda-Ruiz y Kendrick, 1991), solo ha sido reportada para Tailandia (Pinruan et al., 2007).

Dactylaria uniseptata Matsush., Microfungi of the Solomon Islands and Papua-New Guinea: 19. 1971. Fig. 8.

Colonias pilosas, pardas oscuras. Conidióforos macronematosos, mononematosos, simples, rectos o flexuosos, pardos oscuros en la base, más claros hacia el ápice, 50-98 × 3-3.5 µm. Células conidiógenas poliblásticas, terminales, integradas, simpodiales, denticuladas, subhialinas. Conidios elipsoidales, truncados en la base, con un septo en la parte media, gutulados, subhialinos, 14-16 × 4-5 µm.

Material estudiado. Ramas en descomposición. CHM-UJAT-09. Col. K. Martínez-Rivera, 11/02/2011.

Distribución. Esta especie ha sido recolectada en el continente asiático en localidades de China (Cai et al., 2002 y Zhuang, 2001) así como en Nueva Guinea (Matsushima, 1971).

Melanocephala cupulifera S. Hughes, New Zealand J. Bot. 17: 168. 1979. Fig. 9.

Colonias dispersas, de pardas oscuras a negras. Conidióforos macronematosos, mononematosos, simples, erectos, rectos, pardos en la base, más claros hacia el ápice, lisos, 60-83 × 6-7.5 µm. Células conidiógenas monoblásticas, integradas, con 3-6 proliferaciones percurrentes, caliciformes. Conidios solitarios, simples, obovoides, 2-3 septos transversales gruesos, pardo negruzcos, ligeramente constreñidos, base truncada y ápice redondeado, pardos oscuros, 33-39 × 19-23 µm.

Material estudiado. Ramas en descomposición. CHM-UJAT-17. Col. K. Martínez-Rivera, 11/02/2011.

Observaciones. Los conidióforos del material estudiado son más pequeños que los reportados por Hughes (1979; 80-110 µm). Sin embargo, el tamaño y forma de los conidios coinciden con los de la especie tipo (30-43 x 18-23.5 µm) (Hughes, 1979).

Distribución. Esta especie ha sido reportada de Nueva Zelanda (Hughes, 1979 y McKenzie et al., 1992), Hong Kong (Zhuang, 2001) y la India (Rao y Hoog, 1986).

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Figs. 2-9. 2. Atrosetaphiale flagelliformis: conidióforo con células conidiógenas ampuliformes y conidios filiformes. 3. Beltraniopsis ramosa: a. conidióforo setiforme ramificado, b. células separadoras y conidios bicónicos. 4. Berkleasmium sinense: esporodoquio con conidios muriformes. 5. Clonostachys compactiuscula: a. conidio cilíndrico, b. parte apical del conidióforo peniciliforme. 6. D. filiformis: a. conidios filiformes, b. conidióforo con células conidiógenas denticuladas. 7. D. hemibeltranioidea: conidióforo con células conidiógenas simpodiales y conidios cilíndricos. 8. D. uniseptata: conidióforo con conidios elipsoidales con un septo transversal. 9. Melanocephala cupulifera: conidióforo con célula conidiógena caliciforme y conidio con dos septos.

Monilochaetes guadalcanalensis (Matsush.) I.H. Rong & W. Gams, Mycotaxon 76: 455. 2000. Fig. 10.

Colonias dispersas, pardas oscuras, pilosas. Conidióforos erectos, rectos o ligeramente flexuosos, septados, lisos, pardos oscuros en la parte basal, más claros hacia el ápice, 257-300 × 5-6 µm, en la parte apical de 2-3 µm. Células conidiógenas monofialídicas, con collarín terminal, percurrentes. Conidios catenulados, elipsoidales, lisos, parte basal truncada y parte apical redondeada, hialinos, 17-21 × 5-8 µm.

Material estudiado. En hojas en descomposición. CHM-UJAT-19. Col. K. Martínez-Rivera, 11/11/2010.

Observaciones. El ejemplar estudiado difiere ligeramente del material tipo en el ancho de los conidios (16-30 × 8-10 µm) (Matsushima, 1971). Sin embargo, el resto de la morfología coincide con la de la especie. La ubicación taxonómica de este hongo ha tenido varios cambios: Gams y Holubová-Jechová (1976) la transfirieron del género Catenularia a Exochalara, más tarde Rong y Gams (2000) la ubicaron nuevamente en el género Monilochaetes.

Distribución. Además del material tipo procedente del Japón (Matsushima, 1971), M. guadalcanalensis solo había sido recolectada en Cuba (Mercado-Sierra et al., 1997).

Mycoleptodiscus taiwanensis Matsush., Matsushima Mycol. Mem. 5: 21. 1987. Fig. 11.

Conidiomas de tipo esporodoquio, punctiformes, pardos oscuros, dispersos. Conidióforos ausentes. Células conidiógenas fialídicas, doliformes, 6-10.5 × 7-11 µm. Conidios lunados, hialinos, 12-20 × 6-6.5 µm, con una sétula en cada extremo de 1-3 µm de largo.

Material estudiado. Hojas en descomposición. CHM-UJAT-20. Col. K. Martínez-Rivera, 11/11/2010.

Observaciones. Mycoleptodiscus taiwanensis es muy similar a M. atromaculans y M. indicus, se diferencian en que los conidios de M. atromaculans son más largos (16.5-25 × 6.5-8.5 µm) y M. indicus presenta apéndices apicales de mayor tamaño (1-10 µm).

Distribución. Solo se encontró el registro del material tipo, el cual fue detectado sobre raquis de hojas muertas de Areca catechu (Arecaceae) colectadas en Taiwán (Matsushima, 1987).

Sporidesmium dissolvens Hol.-Jech., Mercado & J. Mena, Česká Mykol. 40: 156. 1986. Fig. 12.

Colonias efusas, pilosas, pardas oscuras. Conidióforos macronematosos, mononematosos, erectos, rectos o ligeramente flexuosos, pardos oscuros aclarándose hacia el ápice, 32-115 × 4.5 μm. Células conidiógenas monoblásticas, integradas, terminales, percurrentes, cilíndricas, pardas oscuras. Conidios obclavados, obpiriformes, con 3 septos, la célula basal más grande que las otras, pardos oscuros, la célula apical subhialina, con una túnica mucilaginosa en la punta, 30-40 × 10-12 μm, parte basal de 3-4 μm.

Material estudiado. Ramas en descomposición. CHM-UJAT-29. Col. K. Martínez-Rivera, 11/11/2010.

Observaciones. El rasgo característico de S. dissolvens es la presencia de una túnica mucilaginosa, subhialina en la parte apical del conidio.

Distribución. Esta especie solo ha sido registrada para la zona del Caribe, Cuba (Holubová-Jechová et al., 1986) y Federación de Indias Occidentales (Minter et al., 2001).

Stilbella clavispora Seifert, Stud. Mycol. 27: 80. 1985. Figs. 13a y 13b.

Conidiomas de tipo sinema, conspicuos, blanquecinos, cilíndricos, capitados, simples, claviformes, blancos, ligeramente pardos al madurar, 350-400 × 25-59 μm. Conidióforos macronematosos, ramificados, biverticilados, hialinos, 15-25 × 2-2.5 μm. Células conidiógenas fialídicas, terminales, verticiladas, cilíndricas, hialinas, 30 × 2 μm. Conidios elipsoidales, claviformes, hialinos, sin septos, aglutinados en una masa mucilaginosa, 8-12 × 3-4.5 μm.

Material estudiado. Ramas en descomposición. CHM-UJAT-32. Col. K. Martínez-Rivera, 11/02/2011.

Observaciones. Las características morfológicas y las dimensiones del material estudiado coinciden con las de la descripción de la especie.

Distribución. Se encontraron registros de Suecia (Seifert, K.A. 1985) y de Cuba (CYBERNOME).

Thozetella havanensis R.F. Castañeda, Rev. Jardín Bot. Nac. 5: 69. 1984. Fig. 14.

Conidiomas de tipo sinema, dispersos, mucosos en el ápice, pardos oscuros en la base y blanquecinos en el ápice. Conidióforos macronematosos, cilíndricos, ramificados en el ápice. Células conidiógenas fialídicas, cilíndricas, ampuliformes o lageniformes. Microaristas sigmoides, alantoides, lisas de la parte basal al centro y rugosas en la parte apical, subhialinas, 17-21 × 2-3 µm. Conidios falciformes, hialinos, 11-13 × 1-2 µm, con una sétula filiforme de 4-6 µm de longitud en cada extremo.

Material estudiado. Hojas en descomposición. CHM-UJAT-34. Col. K. Martínez-Rivera, 11/11/2010.

Observaciones. El material estudiado concuerda con la morfología y las medidas proporcionadas por Castañeda-Ruiz (1984).

Distribución. Se encontraron registros para Brasil (Grandi et al., 1995), Cuba (Castañeda-Ruiz, 1984; Mercado-Sierra et al., 1997; Delgado-Rodríguez y Mena-Portales, 2004b), España (CYBERNOME) y Nigeria (Calduch et al., 2002).

Vermiculariopsiella parvula Nawawi, Kuthub. & B. Sutton, Mycotaxon 37:177. 1990. Figs. 15a y 15b.

Conidiomas de tipo esporodoquio, solitarios, pardos oscuros, con una masa blanquecina en el ápice, rodeados de setas. Setas erectas, rectas o ligeramente flexuosas, lisas, septadas, pared gruesa con las puntas agudas, pardas oscuras, 110-300 × 3-4 µm. Conidióforos cilíndricos, cortos, densamente agrupados, hialinos. Células conidiógenas monofialídicas, lageniformes, hialinas. Conidios cilíndricos, lisos, unicelulares, gutulados, con el ápice ligeramente curvo o puntiagudo, hialinos, agrupados en masas mucilaginosas blanquecinas, 11-12 × 2-3 µm.

Material estudiado. Hojas en descomposición. CHM-UJAT-35. Col. K. Martínez-Rivera, 11/11/2010.

Observaciones. Vermiculariopsiella parvula se diferencia de las demás especies del género por presentar una pequeña curvatura en la parte apical del conidio.

Distribución. No se encontraron registros de la especie después de que fue descrita a partir de material colectado en Malasia (Nawawi et al., 1990).

Zygosporium geminatum S. Hughes, Mycol. Pap. 44: 5. 1951. Figs. 16a y 16b.

Colonias compactas, pardas oscuras. Conidióforos mononematosos, macronematosos, erectos, simples, subulados hacia el ápice, pardos, 90-110 × 3-5 μm. Vesículas curvas, truncadas, cónicas en el ápice, pardas oscuras, 12-15 × 6-7 μm. Células conidiógenas monoblásticas, discretas, determinadas, ampuliformes, ovoides, hialinas. Conidios elipsoidales, verrugosos, pardos, 20-30 × 8-10 μm.

Material estudiado. Hojas en descomposición de Aechmea bracteata (Bromeliaceae). CHM-UJAT-40. Col. K. Martínez-Rivera, 11/11/2010.

Observaciones. La morfología y las medidas del material estudiado concuerdan con las proporcionadas por Hughes (1951).

Distribución. Ha sido reportada del continente africano: Ghana (Hughes, 1951) y Uganda (Ellis, 1971), y del americano: Venezuela (Castañeda-Ruiz et al., 2003).

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Figs. 10-16. 10. Monilochaetes guadalcanalensis: conidióforo con conidios catenulados. 11. Mycoleptodiscus taiwanensis: esporodoquio y conidio. 12. Sporidesmium dissolvens: conidióforo con conidio obclavado con gota mucilaginosa en el ápice. 13. Stilbella clavispora: a. parte apical del sinema con células conidiógenas y conidios, b. conidios claviformes. 14. Thozetella havanensis: sinema con aristas y conidios. 15. Vermiculariopsiella parvula: a. conidios, b. esporodoquio con setas y conidios. 19. Zygosporium geminatum: a. conidio elipsoidal verrugoso, b. conidióforo con vesícula y célula conidiógena integrada.

Especies registradas previamente para México

Beltrania rhombica Penz., Michelia 2: 474. 1882.

Material estudiado: Hojas en descomposición. CHM-UJAT-02. Col. K. Martínez-Rivera, 11/11/2010. Registros anteriores: Tabasco (Becerra et al., 2007), Tamaulipas y Veracruz (Heredia, 1994).

Dactylaria parvispora (Preuss) de Hoog & Arx, Kavaka 1: 58. 1973.

Material estudiado: Hojas en descomposición. CHM-UJAT-24. Col. K. Martínez-Rivera, 11/11/2010. Registros anteriores: Veracruz (Heredia et al., 1997).

Dictyochaeta fertilis (S. Hughes & W.B. Kendr.) Hol.-Jech., Folia Geobot. Phytotax. 19: 426. 1984.

Material estudiado: Ramas en descomposición. CHM-UJAT-10. Col. K. Martínez-Rivera, 11/11/2010. Registros anteriores: Veracruz (Heredia et al., 2000b).

Ellisembia adscendens (Berk.) Subram., Proc. Indian Natl. Sci. Acad. Part B. Biol. Sci. 58(4): 183. 1992.

Material estudiado: Ramas en descomposición. CHM-UJAT-11. Col. K. Martínez-Rivera, 11/11/2010. Registros anteriores: Tabasco (Becerra et al., 2007) y Veracruz (Heredia et al., 2004).

Exserticlava vasiformis (Matsush.) S. Hughes, New Zealand J. Bot. 16: 332. 1978.

Material estudiado: Hojas en descomposición de Aechmea bracteata (Bromeliaceae). CHM-UJAT-13. Col. K. Martínez-Rivera, 11/11/2010. Registros anteriores: Veracruz (Heredia et al., 2004).

Helminthosporium palmigenum Matsush., Microfungi of the Solomon Islands and Papua-New Guinea: p. 30. 1971.

Material estudiado: Ramas en descomposición. CHM-UJAT-14. Col. K. Martínez-Rivera, 11/11/2010. Registros anteriores: Tabasco (Becerra et al., 2007).

Hermatomyces amphisporus R.F. Castañeda & Heredia, Cryptogamie Mycol. 21: 223. 2000.

Material estudiado: Ramas en descomposición. CHM-UJAT-15. Col. K. Martínez-Rivera, 11/02/2011. Registros anteriores: Veracruz (Castañeda-Ruiz y Heredia, 2000).

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AGRADECIMIENTOS

Este trabajo se realizó mediante el apoyo de los proyectos FOMIX-CONACYT (TAB-2009-C18-122083) “Diversidad y conservación de los hongos macro y microscópicos saprobios de algunos ambientes del Parque Estatal Agua Blanca, Macuspana, Tabasco” y PROMEP (UJAT-PTC-094) “Evaluación de las comunidades de hongos microscópicos saprobios del suelo y de la hojarasca del Parque Estatal Agua Blanca, Macuspana, Tabasco”. La primera autora agradece la beca que le fue otorgada a través del primer proyecto y al Consejo Nacional de Ciencia y Tecnología (CONACYT-320647) por el apoyo obtenido para los estudios de Maestría en Ciencias Ambientales de la Universidad Juárez Autónoma de Tabasco. Los autores reconocen las facilidades otorgadas por la UJAT y por el Instituto de Ecología, A.C.

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Recibido en junio de 2012.

Aceptado en octubre de 2013.

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