Diversidad genética en poblaciones de Pinus remota (Pinaceae) del Noreste de México: evidencias de declinamiento demográfico histórico

Autores/as

DOI:

https://doi.org/10.21829/abm128.2021.1890

Palabras clave:

conservación, cuellos de botella, endogamia, estructura genética, microsatélites, Pinus.

Resumen

Métodos: El estudio se realizó en siete poblaciones representativas de su distribución natural en México, con muestras de acículas de 112 árboles analizadas con cinco microsatélites de núcleo. Los datos se evaluaron con parámetros de la genética de poblaciones y métodos de aproximación Bayesiana.

Resultados clave: La heterocigosidad promedio esperada (He=0.557) fue más alta que la observada (Ho=0.375). Las poblaciones no se encuentran en equilibro Hardy-Weinberg, con una endogamia significativa (FIS=0.259) y tamaños efectivos reducidos (Ne entre 375-425); están estructuradas en tres grupos genéticos (FST=0.158), con valores altos del índice Mc (0.186-0.283), sugiriendo eventos de declinamiento demográfico ancestral (entre 11,910 y 23,820 años atrás), asociados con los cambios climáticos del Pleistoceno.

Conclusiones: El estudio demuestra que P. remota contiene una variación genética considerable, pero estructurada espacialmente y asociada a cuellos de botella ancestrales. Además, se confirma que P. catarinae es su sinónimo. La especie ha sido capaz de subsistir y adaptarse a condiciones ambientales locales. Con este conocimiento se plantean estrategias para la conservación de las poblaciones remanentes de la especie.

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Biografía del autor/a

Patricia Delgado Valerio,

Universidad Michoacana de San Nicolás de Hidalgo

Laboratorio de Genética. Profesora Investigadora Titular B de TC.

Citas

Applied Biosystems. 2006. Peak ScannerTM Software, version 1. Applied Biosystems. Foster City, California, USA.

Balloux, F. y J. Goudet. 2002. Statistical properties of population differentiation estimators under stepwise mutation in a finite island model. Molecular Ecology 11(4): 771-783. DOI: https://doi.org/10.1046/j.1365-294x.2002.01474.x DOI: https://doi.org/10.1046/j.1365-294X.2002.01474.x

Bijlsma, R. y V. Loeschcke. 2012. Genetic erosion impedes adaptive responses to stressful environments. Evolutionary Applications 5(2): 117-129. DOI: https://doi.org/10.1111/j.1752-4571.2011.00214.x DOI: https://doi.org/10.1111/j.1752-4571.2011.00214.x

Bilgen, B. B. y N. Kaya. 2017. Genetic diversity among Pinus sylvestris L. populations and its implications for genetic conservation: comparison of nuclear and chloroplast microsatellite markers. Fresenius Environmental Bulletin 26(11): 6873-6881.

Bohonak, A. J. 2002. IBD (Isolation By Distance): a program for analyses of isolation by distance. Journal of Heredity 93: 153-154. DOI: https://doi.org/10.1093/jhered/93.2.153 DOI: https://doi.org/10.1093/jhered/93.2.153

Boys, J., M. Cherry y S. Dayanandan. 2005. Microsatellite analysis reveals genetically distinct populations of red pine (Pinus resinosa, Pinaceae). American Journal of Botany 92(5): 833-841. DOI: https ://doi.org/10.3732/ajb.92.5.833 DOI: https://doi.org/10.3732/ajb.92.5.833

Chapuis, M. P. y A. Estoup. 2007. Microsatellite null alleles and estimation of population differentiation. Molecular Biology and Evolution 24(3): 621-631. DOI: https://doi.org/10.1093/molbev/msl191 DOI: https://doi.org/10.1093/molbev/msl191

Chhatre, V. E. y O. P. Rajora. 2014. Genetic divergence and signatures of natural selection in marginal populations of a keystone, long-lived conifer, eastern white pine (Pinus strobus) from northern Ontario. PLoS ONE 9(5): e97291. DOI: https://doi.org/10.1371/journal.pone.0097291 DOI: https://doi.org/10.1371/journal.pone.0097291

Cornuet, J. M. y G. Luikart. 1996. Description and power analysis of two tests for detecting recent population bottlenecks from allele frequency data. Genetics 144(4): 2001-2014. DOI: https://doi.org/10.1093/genetics/144.4.2001

Cuenca, A. 2003. Evidencia de dos linajes genéticos en Pinus cembroides revelada por microsatélites de cloroplasto. Tesis de maestría. Facultad de Ciencias, Universidad Nacional Autónoma de México. Cd. Mx., México. 86 pp.

Delgado, P., A. Cuenca, A. E. Escalante, F. Molina-Freaner y D. Piñero. 2002. Comparative genetic structure in pines: evolutionary and conservation consequences. Revista Chilena de Historia Natural 75(1): 27-37. DOI: https://doi.org/10.4067/S0716-078X2002000100004 DOI: https://doi.org/10.4067/S0716-078X2002000100004

Delgado, P. y D. Piñero. 2008. Marcadores moleculares, variación genética y filogeografía en árboles forestales. In: Sánchez-Velásquez, L. R. (ed.). Ecología, Manejo y Conservación de los Ecosistemas de Montaña en México. Editorial MundiPrensa. Cd. Mx., México. Pp. 1-19.

Delgado, P., D. Piñero, V. Rebolledo, L. Jardón y F. Chi. 2011. Genetic variation and demographic contraction of the remnant populations of Mexican Caribbean pine (Pinus caribaea var. hondurensis: Pinaceae). Annals of Forest Science 68(1): 121-128. DOI: https://doi.org/10.1007/s13595-011-0013-2 DOI: https://doi.org/10.1007/s13595-011-0013-2

Delgado Valerio, P., J. Núñez Medrano, Ma. C. Rocha Granados y J. Muñoz Flores. 2013. Variación genética de dos áreas semilleras de pino establecidas en Michoacán. Revista Mexicana de Ciencias Forestales 4(8): 104-115. DOI: https://doi.org/10.29298/rmcf.v4i18.393 DOI: https://doi.org/10.29298/rmcf.v4i18.393

Di Rienzo, A., A. Peterson, J. C. Garza, A. M. Valdes, M. Slatkin y N. B. Freimer. 1994. Mutational processes of simple-sequence repeat loci in human populations. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America 91(8): 3166-3170. DOI: https://doi.org/10.1073/pnas.91.8.3166 DOI: https://doi.org/10.1073/pnas.91.8.3166

Dvorak, W. S., K. M. Potter, V. D. Hipkins y G. R. Hodge. 2009. Genetic diversity and gene exchange in Pinus oocarpa, a Mesoamerican pine with resistance to the pitch canker fungus (Fusarium circinatum). International Journal of Plant Science 170(5): 609-626. DOI: https://doi.org/10.1086/597780 DOI: https://doi.org/10.1086/597780

Earl, D. A. y B. M. vonHoldt. 2012. STRUCTURE HARVESTER: a website and program for visualizing STRUCTURE output and implementing the Evanno method. Conservation Genetics Resources 4(2): 359-361. DOI: https://doi.org/10.1007/s12686-011-9548-7 DOI: https://doi.org/10.1007/s12686-011-9548-7

Echt, C. S., P. May-Marquardt, M. Hseih y R. Zahorchak. 1996. Characterization of microsatellite markers in white pine. Genome 39(6): 1102-1108. DOI: https://doi.org/10.1139/g96-138 DOI: https://doi.org/10.1139/g96-138

Ellstrand, N. C. 2014. Is gene flow the most important evolutionary force in plants? American Journal of Botany 101(5): 737-753. DOI: http://doi.org/10.3732/ajb.1400024 DOI: https://doi.org/10.3732/ajb.1400024

El Mousadik, A. y R. J. Petit. 1996. High level of genetic differentiation for allelic richness among populations of the argan tree (Argania spinosa (L.) Skeels) endemic to Morocco. Theoretical and Applied Genetics 92: 832-839. DOI: https://doi.org/10.1007/BF00221895 DOI: https://doi.org/10.1007/BF00221895

Evanno, G., S. Regnaut y J. Goudet. 2005. Detecting the number of clusters of individuals using the software STRUCTURE: a simulation study. Molecular Ecology 14(8): 2611-2620. DOI: https://doi.org/10.1111/j.1365-294x.2005.02553.x DOI: https://doi.org/10.1111/j.1365-294X.2005.02553.x

Excoffier, L. y H. E. L. Lischer. 2010. Arlequin suite version 3.5: a new series of programs to perform population genetics analyses under Linux and Windows. Molecular Ecology Resources 10(3): 564-567. DOI: https://doi.org/10.1111/j.1755-0998.2010.02847.x DOI: https://doi.org/10.1111/j.1755-0998.2010.02847.x

Falush, D., M. Stephens y J. K. Pritchard. 2003. Inference of population structure using multilocus genotype data: linked loci and correlated allele frequencies. Genetics 164(4): 1567-1587. DOI: https://doi.org/10.1093/genetics/164.4.1567

Farjon, A. 2013. Pinus remota. The IUCN Red List of Threatened Species 2013: e.T42409A2978032. DOI: https://doi.org/10.2305/IUCN.UK.2013-1.RLTS.T42409A2978032.en DOI: https://doi.org/10.2305/IUCN.UK.2013-1.RLTS.T42409A2978032.en

Farjon, A. y B. T. Styles. 1997. Pinus (Pinaceae). Flora Neotropical 75: 1-246.

Favela, L. S. 2004. Taxonomy and genetic variation of pinyon pines (Pinus subsection Cembroides) in the Northeast of Mexico. PhD Thesis. Edinburgh University. Edinburgh, Scotland. 142 pp.

Frankham, R. 1995. Conservation Genetics. Annual Review of Genetics 29: 305-327. DOI: https://doi.org/10.1146/annurev.ge.29.120195.001513

Fuentes-Amaro, S. L., J. P. Legaria-Solano y C. Ramírez-Herrera. 2019. Estructura genética de poblaciones de Pinus cembroides de la región central de México. Revista Fitotecnia Mexicana 42(1): 57-65. DOI: https://doi.org/10.35196/rfm.2019.1.57-65

García-Gómez, V., C. Ramírez-Herrera, C. Flores-López y J. López-Upton. 2014. Diversidad y estructura genética de Pinus johannis. Agrociencia 48(8): 863-873.

Garrido-Garduño, T. y E. Vázquez-Domínguez. 2013. Métodos de análisis genéticos, espaciales y de conectividad en genética del paisaje. Revista Mexicana de Biodiversidad 84(3): 1031-1054. DOI: https://doi.org/10.7550/rmb.32500 DOI: https://doi.org/10.7550/rmb.32500

Garza, J. C. y E. G. Williamson. 2001. Detection of reduction in population size using data from microsatellite loci. Molecular Ecology 10(2): 305-318. DOI: https://doi.org/10.1046/j.1365-294X.2001.01190.x DOI: https://doi.org/10.1046/j.1365-294x.2001.01190.x

GBIF. 2021. Registros de presencia de Pinus remota (Little) D.K. Bailey & Hawksw. Global Biodiversity Information Facility. DOI: http: //doi.org/10.15468/dl.example-donotcite

Gernandt, D. S., A. Liston y D. Piñero. 2003. Phylogenetics of Pinus subsections Cembroides and Nelsoniae Inferred from cpDNA sequences. Systematic Botany 28(4): 657-673. DOI: https://doi.org/10.1043/02-63.1

Gernandt, D. S., G. Geada López, S. Ortiz García y A. Liston. 2005. Phylogeny and classification of Pinus. Taxon 54(1): 29-42. DOI: https://doi.org/10.2307/25065300 DOI: https://doi.org/10.2307/25065300

Gernandt, D. S. y J. A. Pérez de la Rosa. 2013. Biodiversidad de Pinophyta (coníferas) en México. Revista Mexicana de Biodiversidad, 85(suppl. 1): 126-133. DOI: https://doi.org/10.7550/rmb.32195 DOI: https://doi.org/10.7550/rmb.32195

Guo, S. W. y E. A. Thompson. 1992. Performing the exact test of Hardy-Weinberg proportion for multiple alleles. Biometrics 48(2): 361-372. DOI: https://doi.org/10.2307/2532296 DOI: https://doi.org/10.2307/2532296

Hamrick, J. L., M. J. W. Godt y S. L. Sherman B. 1995. Gene flow among plant populations: evidence from genetic markers. In: Hoch, P. C. y A. G. Stephenson (eds.). Experimental and molecular approaches to plant biosystematics. Monographs in Systematic Botany, Missouri Botanical Garden Press. St. Louis, USA. Pp. 215-232.

Hardy, O. J., N. Charbonnel, H. Fréville y M. Heuertz. 2003. Microsatellite allele sizes: a simple test to assess their significance on genetic differentiation. Genetics 163(4): 1467-1482. DOI: https://doi.org/10.1093/genetics/163.4.1467

Holderegger, R., D. Buehler, F. Gugerli y S. Manel. 2010. Landscape genetics of plants. Trends in Plant Science 15(12): 675-683. DOI: https://doi.org/10.1016/j.tplants.2010.09.002 DOI: https://doi.org/10.1016/j.tplants.2010.09.002

INEGI. 2009a. Prontuario de Información Geográfica de los Estados Unidos Mexicanos, Castaños, Coahuila de Zaragoza, Clave geoestadística 05006. Instituto Nacional de Estadística, Geografía e Informática. http://www3.inegi.org.mx/contenidos/app/mexicocifras/datos_geograficos/05/05006.pdf (consultado febrero de 2020).

INEGI. 2009b. Prontuario de Información Geográfica de los Estados Unidos Mexicanos, Santa Catarina nuevo León, Clave geoestadística 19048. Instituto Nacional de Estadística, Geografía e Informática. http://www3.inegi.org.mx/contenidos/app/mexicocifras/datos_geograficos/19/19048pdf (consultado febrero de 2020).

IUCN. 2021. International Union for Conservation of Nature (IUCN) Red List of threatened species: version 2021-1. http://www.iucnredlist.org (consultado enero de 2021).

Jakobsson, M. y N. A. Rosenberg. 2007. CLUMPP: a cluster matching and permutation program for dealing with label switching and multimodality in analysis of population structure. Bioinformatics 23(14): 1801-1806. DOI: https://doi.org/10. 1093/bioinformatics/btm233 DOI: https://doi.org/10.1093/bioinformatics/btm233

Kimura, M. y T. Ohta. 1978. Stepwise mutation model and distribution of allelic frequencies in a finite population. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America 75(6): 2868-2872. DOI: https://doi.org/10.1073/pnas.75.6.2868 DOI: https://doi.org/10.1073/pnas.75.6.2868

Lanner, R. M. y T. R. Van Devender. 1981. Late Pleistocene Piñon Pines in the Chihuahuan Desert. Quaternary Research 15(3): 278-290. DOI: https://doi.org/10.1016/0033-5894(81)90031-4 DOI: https://doi.org/10.1016/0033-5894(81)90031-4

Ledig, F. T., B. Bermejo-Velázquez, P. D. Hodgskiss, D. R. Johnson, C. Flores-López y V. Jacob-Cervantes. 2000. The mating system and genic diversity in Martínez spruce, an extremely rare endemic of México's Sierra Madre Oriental: an example of facultative selfing and survival in interglacial refugia. Canadian Journal of Forest Research 30(7): 1156-1164. DOI: https://doi.org/10.1139/x00-052 DOI: https://doi.org/10.1139/x00-052

Ledig, F. T., M. A. Capó-Arteaga, P. D. Hodgskiss, H. Sbay, C. Flores-López, M. T. Conkle y B. Bermejo-Velázquez. 2001. Genetic diversity and the mating system of a rare Mexican piñon, Pinus pinceana, and a comparison with Pinus maximartinezii (Pinaceae). American Journal of Botany 88(11): 1977-1987. DOI: https://doi.org/10.2307/3558425 DOI: https://doi.org/10.2307/3558425

Lemus, S. J. L. 1999. Maduración de conos, producción y viabilidad de las semillas de Pinus catarinae M. F. Robert-Passini. Tesis de licenciatura. Departamento Forestal, Universidad Autónoma Agraria Antonio Narro. Saltillo, Coahuila, México. 42 pp.

Linares J. C. y P. A. Tiscar. 2010. Climate change impacts and vulnerability of the southern populations of Pinus nigra subsp. salzmannii. Tree Physiology 30(7): 795-806. DOI: http://doi.org/10.1093/treephys/tpq052 DOI: https://doi.org/10.1093/treephys/tpq052

Luikart, G. y J. M. Cornuet. 1998. Empirical evaluation of a test for identifying recently bottlenecked populations from allele frequency data. Conservation Biology 12(1): 228-237. DOI: https://doi.org/10.1111/j.1523-1739.1998.96388.x DOI: https://doi.org/10.1046/j.1523-1739.1998.96388.x

Marquardt, P. E. y B. K. Epperson. 2004. Spatial and population genetic structure of microsatellites in white pine. Molecular Ecology 13(11): 3305-3315. DOI: https://doi.org/10.1111/j.1365-294x.2004.02341.x DOI: https://doi.org/10.1111/j.1365-294X.2004.02341.x

Mata, B. J. M., G. E. Treviño, A. Valdecantos, J. P. Jiménez, O. Aguirre, E. Alamis y R. Foroughbackhch. 2014. Diversidad y Composición Vegetal de Matorrales en el Valle de Santa Catarina, en el Noreste de México. Revista Iberoamericana de Ciencias 1(3): 1-15.

Molina-Freaner, F., P. Delgado, D. Piñero, N. Pérez-Nasser y E. Álvarez-Buylla. 2001. Do rare pines need different conservation strategies? Evidence from three Mexican species. Canadian Journal of Botany 79: 131-138. DOI: https://doi.org/10.1139/b00-155 DOI: https://doi.org/10.1139/b00-155

Montes, J. R., P. Peláez, A. Willyard, A. Moreno-Letelier, D. Piñero y D. S. Gernandt. 2019. Phylogenetics of Pinus Subsection Cembroides Engelm. (Pinaceae) Inferred from Low-Copy Nuclear Gene Sequences. Systematic Botany 44(3): 501-518. DOI: http://doi.org/10.1600/036364419X15620113920563 DOI: https://doi.org/10.1600/036364419X15620113920563

Naydenov, K. D., M. K. Naydenov, A. Alexandrov, K. Vasilevski, G. Hinkov, V. Matevski, B. Nikolic, V. Goudiaby, D. Riegert, D. Paitaridou, A. Christou, I. Goia, C. Carcaillet, A. Escudero Alcantara, C. Ture, S. Gulcu, V. Gyuleva, S. Bojovic, L. Peruzzi, S. Kamary, A. Tsarev y Faruk Bogunic. 2017. Ancient genetic bottleneck and Plio-Pleistocene climatic changes imprinted the phylobiogeography of European Black Pine populations. European Journal of Forest Research 136: 767-786. DOI: https://doi.org/10.1007/s10342-017-1069-9 DOI: https://doi.org/10.1007/s10342-017-1069-9

Naydenov, K. D., I. Mladenov, A. Alexandrov, M. K. Naydenov, V. Gyuleva, V. Goudiaby, B. Nikolić y S. Kamary. 2015. Patterns of genetic diversity resulting from bottlenecks in European black pine, with implications on local genetic conservation and management practices in Bulgaria. European Journal of Forest Research 134(4): 669-681. DOI: https://doi.org/10.1007/s10342-015-0881-3 DOI: https://doi.org/10.1007/s10342-015-0881-3

Nei, M. 1987. Molecular evolutionary genetics. Columbia University Press. New York, USA. 512 pp. DOI: https://doi.org/10.7312/nei-92038 DOI: https://doi.org/10.7312/nei-92038

Oliveira, E. J., J. Gomes Pádua, M. I. Zucchi, R. Vencovsky y M. L. Carneiro Vieira. 2006. Origin, evolution and genome distribution of microsatellites. Genetics and Molecular Biology 29(2): 294-307. DOI: http://doi.org/10.1590/S1415-47572006000200018 DOI: https://doi.org/10.1590/S1415-47572006000200018

Parraguirre Lezama, C., J. J. Vargas Hernández, P. Ramírez Vallejo, H. S. Azpíroz Rivero y J. Jasso Mata. 2002. Estructura de la diversidad genética en poblaciones naturales de Pinus greggii Engelm. Revista Fitotecnia Mexicana 25(3): 279-287. DOI: https://doi.org/10.35196/rfm.2002.3.279

Passini, M.-F. 1982. Les forêts de Pinus cembroides au Mexique: Étude phytogéographique et écologique (Etudes Mésoamericaines II-5). Editions Recherche sur les Civilisations. Paris, France. 373 pp.

Pérez de la Rosa, J. A. y D. S. Gernandt. 2017. Pinus vallartensis (Pinaceae), a new species from western Jalisco, Mexico. Phytotaxa 331(2): 233-242. DOI: https://doi.org/10.11646/phytotaxa.331.2.7 DOI: https://doi.org/10.11646/phytotaxa.331.2.7

Perry, J. P. Jr. 1991. The pines of Mexico and Central America. Timber Press. Portland, USA. 231 pp.

Pinzauti, F., F. Sebastiani, K. B. Budde, B. Fady, S. C. González-Martínez y G. G. Vendramin. 2012. Nuclear microsatellites for Pinus pinea (Pinaceae), a genetically depauperate tree, and their transferability to P. halepensis. American Journal of Botany 99(9): e362-e365. DOI: https://doi.org/10.3732/ajb.1200064 DOI: https://doi.org/10.3732/ajb.1200064

Piry, S., G. Luikart y J. M. Cornuet. 1999. Computer note. Bottleneck: a computer program for detecting recent reductions in the effective population size using allele frequency data. Journal of Heredity 90(4): 502-503. DOI: https://doi.org/10.1093/jhered/90.4.502 DOI: https://doi.org/10.1093/jhered/90.4.502

Price, R. A., A. Liston y S. H. Strauss. 1998. Phylogeny and Systematics of Pinus. In: Richardson, D. M. (ed.). Ecology and Biogeography of Pinus. Cambridge University Press. New York, USA. Pp. 49-68.

Pritchard, J. K., M. Stephens y P. Donnelly. 2000. Inference of population structure using multilocus genotype data. Genetics 155(2): 945-959. DOI: https://doi.org/10.1093/genetics/155.2.945

Quantum GIS Development Team. 2016. QGIS Geographic Information System (v. 2.16 Nødebo). Open Source Geospatial Foundation Project. República Checa http://www.qgis.osgeo.org (consultado septiembre de 2020).

Ramírez Enríquez, E., P. Delgado-Valerio, J. J. García Magaña y A. Molina Sánchez. 2019. Diversidad genética y conservación de pinos nativos de la cuenca del río Cupatitzio, en Michoacán. Revista Mexicana de Ciencias Forestales 10(52): 4-32. DOI: https://doi.org/10.29298/rmcf.v10i52.410 DOI: https://doi.org/10.29298/rmcf.v10i52.410

Rebolledo Camacho, V., L. Jardón Barbolla, I. Ramírez Morillo, A. Vázquez-Lobo, D. Piñero y P. Delgado. 2018. Genetic variation and dispersal patterns in three varieties of Pinus caribaea (Pinaceae) in the Caribbean Basin. Plant Ecology and Evolution 151(1): 61-76. DOI: https://doi.org/10.5091/plecevo.2018.1343 DOI: https://doi.org/10.5091/plecevo.2018.1343

Romero Manzanares, A., E. García Moya y M-F., Passini. 1996. Pinus cembroides s. l. y Pinus johannis del Altiplano Mexicano: una síntesis. Acta Botanica Gallica 143(7): 681-693. DOI: https://doi.org/10.1080/12538078.1996.10515368 DOI: https://doi.org/10.1080/12538078.1996.10515368

Rousset, F. 2008. GENEPOP’007: a complete re-implementation of the GENEPOP software for Windows and Linux. Molecular Ecology Resources 8(1): 103-106. DOI: http//doi.org/10.1111/j.1471-8286.2007.01931.x DOI: https://doi.org/10.1111/j.1471-8286.2007.01931.x

SEDUE. 2015. Programa Municipal de Desarrollo Urbano 2014-2030 del Municipio de Santa Catarina. Secretaría de Desarrollo Urbano y Ecología. Santa Catarina, México.

SEMARNAT. 2010. NORMA Oficial Mexicana NOM-059-ECOL-2010. Protección ambiental especies nativas de México de flora y fauna silvestres -categorías de riesgo y especificaciones para su inclusión, exclusión o cambio-Lista de especies en riesgo. Diario Oficial de la Federación. Cd. México, México. http://dof.gob.mx/nota_detalle.php?.codigo=5173091&fecha=30/12/2010 (consultado febrero de 2020).

Shinde, D., Y. L. Lai, F. Z. Sun y N. Arnheim. 2003. Taq DNA polymerase slippage mutation rates measured by PCR and quasi-likelihood analysis: (CA/GT)(n) and (A/T)(n) microsatellites. Nucleic Acid Research 31(3): 974-980. DOI: http//doi.org/10.1093/nar/gkg178 DOI: https://doi.org/10.1093/nar/gkg178

Slatkin, M. 1993. Isolation by distance in equilibrium and non-equilibrium populations. Evolution 47(1): 264-279. DOI: https://doi.org/10.2307/2410134 DOI: https://doi.org/10.1111/j.1558-5646.1993.tb01215.x

Slatkin, M. 1995. A measure of population subdivision based on microsatellite allele frequencies. Genetics 139(1): 457-462. DOI: https://doi.org/10.1093/genetics/139.1.457

Snajberk, K. y E. Zavarin. 1986. Monoterpenoid differentiation in relation to the morphology of Pinus remota. Biochemical Systematics and Ecology 14(2): 155-163. DOI: https://doi.org/10.1016/0305-1978(86)90057-8 DOI: https://doi.org/10.1016/0305-1978(86)90057-8

Szpiech, Z. A., M. Jakobsson y N. A. Rosenberg. 2008. ADZE: a rarefaction approach for counting alleles private to combinations of populations. Bioinformatics 24(21): 2498-2504. DOI: https://doi.org/10.1093/bioinformatics/btn478 DOI: https://doi.org/10.1093/bioinformatics/btn478

Vázquez-Lobo, A. 1996. Evolución de hongos endófitos del género Pinus L: Implementación de técnicas moleculares y resultados preliminares. Tesis de Biología. Facultad de Ciencias, Universidad Nacional Autónoma de México. Cd. Mx., México. 66 pp.

Wehenkel, C., S. R. Mariscal-Lucero, J. P. Jaramillo-Correa, C. A. López-Sánchez, J. J. Vargas-Hernández y C. Sáenz-Romero. 2017. Genetic diversity and conservation of Mexican forest trees. In: Ahuja, M. y S. Jain (eds.). Biodiversity and Conservation of Woody Plants. Sustainable Development and Biodiversity, Vol. 17. Springer International Publishing AG. Cham, Switzerland. DOI: http/doi.org/10.1007/978-3-319-66426-2_2 DOI: https://doi.org/10.1007/978-3-319-66426-2_2

Williams, C. G. 2008. Selfed embryo death in Pinus taeda: a phenotypic profile. New Phytologist 178(1): 210-222. DOI: http://doi.org/10.1111/j.1469-8137.2007.02359.x DOI: https://doi.org/10.1111/j.1469-8137.2007.02359.x

Williamson-Natesan, E. G. 2005. Comparison of methods for detecting bottlenecks from microsatellite loci. Conservation Genetics 6(4): 551-562. DOI: https://doi.org/10.1007/s10592-005-9009-5 DOI: https://doi.org/10.1007/s10592-005-9009-5

Zinck, J. W. R. y O. P. Rajora. 2016. Post-glacial phylogeography and evolution of a wide-ranging highly-exploited keystone forest tree, eastern white pine (Pinus strobus) in North America: single refugium, multiple routes. BMC Evolutionary Biology 16: 56. DOI: https://doi.org/10.1186/s12862-016-0624-1 DOI: https://doi.org/10.1186/s12862-016-0624-1

Żukowska, W. B. y W. Wachowiak. 2017. Nuclear microsatellite markers reveal the low genetic structure of Pinus mugo Turra (dwarf mountain pine) populations in Europe. Plant Systematics and Evolution 303: 641-651. DOI: https://doi.org/10.1007/s00606-017-1395-x DOI: https://doi.org/10.1007/s00606-017-1395-x

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Publicado

2021-09-23

Cómo citar

González Jiménez, A., Delgado Valerio, P., Molina Sánchez, A., Flores López, C., Vargas Gutiérrez, J. P., & García Magaña, J. J. (2021). Diversidad genética en poblaciones de Pinus remota (Pinaceae) del Noreste de México: evidencias de declinamiento demográfico histórico. Acta Botanica Mexicana, (128). https://doi.org/10.21829/abm128.2021.1890
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