Primer reporte de Apiospora intestini (Apiosporaceae) en zarzamora (Rubus sp., Rosaceae) en México
DOI:
https://doi.org/10.21829/abm132.2025.2416Palabras clave:
filogenia, fitopatógeno, hongo microscópico, manchas necróticasResumen
Antecedentes y Objetivos: El género Apiospora comprende 157 especies de hongos microscópicos a nivel mundial. Incluye saprobios, simbióticos, endófitos y patógenos, tanto de plantas como de humanos. En un estudio de organismos fitopatógenos de tallos de zarzamora (Rubus sp.) en Taretan, Michoacán, México, aislamos un hongo cuya identificación a género era incierta. Los objetivos de este estudio fueron identificar el aislado a nivel de especie y determinar si representa o no un organismo patógeno para las plantas de zarzamora.
Métodos: Se aisló la cepa fúngica INE47 de los tallos de Rubus 'Tupy'. Se realizó la extracción del ADN y se obtuvieron las secuencias del espaciador transcrito interno (ITS) y del gen del factor de elongación de la traducción 1-alfa (TEF1-α) del aislado. Para construir los árboles filogenéticos, se analizaron las matrices de secuencias relacionadas con Apiospora, para cada marcador por separado y concatenados, usando los métodos de Inferencia Bayesiana y Máxima Verosimilitud. Se llevaron a cabo pruebas de Koch en tallos y hojas de zarzamora para determinar la habilidad patogénica del aislado. Finalmente, se realizó la descripción morfológica de la colonia y de las estructuras micro morfológicas como esporas y conidióforos.
Resultados clave: INE47 fue identificada como Apiospora intestini habitando en plantas de zarzamora en Michoacán, México. Tras las pruebas de patogenicidad, la especie causó una pequeña mancha necrótica en el área inoculada en los tallos y hojas de zarzamora. La severidad de la enfermedad inducida por este aislado no representa un impacto importante para este cultivo.
Conclusiones: Apiospora intestini encontrado en zarzamora representa el primer reporte de este hongo en México. La prueba de patogenicidad y la evaluación de la severidad de la enfermedad demostraron que es un patógeno débil, causando manchas necróticas en los tallos y hojas de zarzamora.
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Agrios, G. N. 2005. Plant pathology. Elsevier Academic Press. San Diego, USA. 950 pp.
Agustí-Brisach, C., P. Castillo, M. L. Lerma, A. López-Moral, A. Trapero and R. M. Muñoz. 2023. First report of Apiospora marii causing wilt and dieback in olive trees in Spain. Journal of Plant Pathology 105(1): 359-359. DOI: https://doi.org/10.1007/s42161-022-01275-z DOI: https://doi.org/10.1007/s42161-022-01275-z
Alfatafta, A. A., J. B. Gloer, J. A. Scott and D. Malloch. 1994. Apiosporamide, a New Antifungal Agent from the Coprophilous Fungus Apiospora montagnei. Journal of Natural Products 57(12): 1696e1702. DOI: https://doi.org/10.1021/np50114a012 DOI: https://doi.org/10.1021/np50114a012
Alves, A., P. W. Crous, A. Correia and A. J. L. Phillips. 2008. Morphological and molecular data reveal cryptic speciation in Lasiodiplodia theobromae. Fungal Diversity 28: 1-13.
Bashiri, S. and J. Abdollahzadeh. 2024. Taxonomy and pathogenicity of fungi associated with oak decline in northern and central Zagros forests of Iran with emphasis on coelomycetous species. Frontiers in Plant Science 15: 1377441. DOI: https://doi.org/10.3389/fpls.2024.1377441 DOI: https://doi.org/10.3389/fpls.2024.1377441
BLAST. 2024. National Library of Medicine (US), National Center for Biotechnology Information. https://blast.ncbi.nlm.nih.gov/blast/Blast.cgi (consulted october, 2024).
Calvillo-Medina, R. P., M. Gunde-Cimerman, E. Escudero-Leyva, L. Barba-Escoto, E. I. Fernández-Tellez, A. A. Medina-Tellez, V. Bautista-de Lucio, M. A. Ramos-López and J. Campos-Guillén. 2020. Richness and metallo-tolerance of cultivable fungi recovered from three high altitude glaciers from Citlaltépetl and Iztaccíhuatl volcanoes (Mexico). Extremophiles 24: 625-636. DOI: https://doi.org/10.1007/s00792-020-01182-0 DOI: https://doi.org/10.1007/s00792-020-01182-0
Cortés Martínez, J., S. Cruz-Esteban and E. Garay-Serrano. 2023. Identificación del alga Cephaleuros virescens s.l. en plantas de zarzamora (Rubus sp.) en el estado de Michoacán, México. Acta Botanica Mexicana 130: e2260. DOI: https://doi.org/10.21829/abm130.2023.2260 DOI: https://doi.org/10.21829/abm130.2023.2260
Crous, P. W. and J. Z. Groenewald. 2013. A phylogenetic re-evaluation of Arthrinium. IMA Fungus 4(1): 133-154. DOI: https://doi.org/10.5598/imafungus.2013.04.01.13 DOI: https://doi.org/10.5598/imafungus.2013.04.01.13
Crous, P. W., M. J. Wingfield, J. J. Le Roux, D. M. Richardson, D. Strasberg, R. G. Shivas, P. Alvarado, J. Edwards, G. Moreno, R. Sharma, M. S. Sonawane, Y. P. Tan, A. Altés, T. Barasubiye, C. W. Barnes, R. A. Blanchette, D. Boertmann, A. Bogo, J. R. Carlavilla, R. Cheewangkoon, R. Daniel, Z. W. de Beer, M. de Jesús Yáñez-Morales, T. A. Duong, J. Fernández-Vicente, A. D. W. Geering, D. I. Guest, B. W. Held, M. Heykoop, V. Hubka, A. M. Ismail, S. C. Kajale, W. Khemmuk, M. Kolařík, R. Kurli, R. Lebeuf, C. A. Lévesque, L. Lombard, D. Magista, J. L. Manjón, S. Marincowitz, J. M. Mohedano, A. Nováková, N. H. Oberlies, E. C. Otto, N. D. Paguigan, I. G. Pascoe, J. L. Pérez-Butrón, G. Perrone, P. Rahi, H. A. Raja, T. Rintoul, R. M. V. Sanhueza, K. Scarlett, Y. S. Shouche, L. A. Shuttleworth, P. W. J. Taylor, R. G. Thorn, L. L. Vawdrey, R. Solano-Vidal, A. Voitk, P. T. W. Wong, A. R. Wood, J. C. Zamora and J. Z. Groenewald. 2015. Fungal Planet description sheets: 371-399. Persoonia-Molecular Phylogeny and Evolution of Fungi 35(1): 264-327. DOI: https://doi.org/10.3767/003158515X690269 DOI: https://doi.org/10.3767/003158515X690269
Crous, P. W., M. Hernández-Restrepo, R. K. Schumacher, D. A. Cowan, G. Maggs-Kölling, E. Marais, M. J. Wingfield, N. Yilmaz, O. C. G. Adan, A. Akulov, E. Álvarez Duarte, A. Berraf-Tebbal, T. S. Bulgakov, A. J. Carnegie, Z. W. de Beer, C. Decock, J. Dijksterhuis, T. A. Duong, A. Eichmeier, L. T. Hien, J. A. M. P. Houbraken, T. N. Khanh, N. V. Liem, L. Lombard, F. M. Lutzoni, J. M. Miadlikowska, W. J. Nel, I. G. Pascoe, F. Roets, J. Roux, R. A. Samson, M. Shen, M. Spetik, R. Thangavel, H. M Thanh, L. D. Thao, E. J. van Nieuwenhuijzen, J. Q. Zhang, Y. Zhang, L. L. Zhao and J. Z. Groenewald. 2021. New and interesting Fungi. 4. Fungal Systematics and Evolution 7(1): 255e343. DOI: https://doi.org/10.3114/fuse.2021.07.13 DOI: https://doi.org/10.3114/fuse.2021.07.13
da Silva, J. A. T., B. Winarto, J. Dobránszki, J. C. Cardoso and S. Zeng. 2016. Tissue disinfection for preparation of culture. Folia Horticulturae 28(1): 57-75. DOI: https://doi.org/10.1515/fhort-2016-0008 DOI: https://doi.org/10.1515/fhort-2016-0008
Gardes, M. and T. D. Bruns. 1993. ITS primers with enhanced specificity for basidiomycetes-application to the identification of mycorrhizae and rusts. Molecular Ecology 2: 113-118. DOI: https://doi.org/10.1111/j.1365-294x.1993.tb00005.x DOI: https://doi.org/10.1111/j.1365-294X.1993.tb00005.x
GenBank. 2024. National Library of Medicine (US), National Center for Biotechnology Information. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/genbank/ (consulted june-september, 2024).
Ghobadi, A. and S. Jamali. 2025. Identification of fungal species associated with gall oak (Quercus infectoria Oliv.) decline in Iran. Plant Disease 1109(1): DOI: https://doi.org/10.1094/PDIS-05-24-0974-RE DOI: https://doi.org/10.1094/PDIS-05-24-0974-RE
Hall, T. A. 1999. BioEdit: a user-friendly biological sequence alignment editor and analysis program for Windows 95/98/NT. Nucleic Acids Symposium Series 41(41): 95-98.
INAFED. 2020. Taretan. Enciclopedia de los municipios y delegaciones de México, en línea. Instituto Nacional para el Federalismo y el Desarrollo Municipal (INAFED). http://www.inafed.gob.mx (consulted March, 2023).
Index Fungorum. 2024. Index Fungorum data base. https://www.indexfungorum.org(consulted october, 2024).
Katoh, K., J. Rozewicki and K. D. Yamada. 2019. MAFFT online service: multiple sequence alignment, interactive sequence choice and visualization. Briefings in Bioinformatics 20(4): 1160-1166. DOI: https://doi.org/10.1093/bib/bbx108 DOI: https://doi.org/10.1093/bib/bbx108
Klemke, C., S. Kehraus, A. D. Wright and G. M. Konig. 2004. New secondary metabolites from the marine endophytic fungus Apiospora montagnei. Journal of Natural Products 67(6): 1058-1063. DOI: https://doi.org/10.1021/np034061x. DOI: https://doi.org/10.1021/np034061x
Kornerup A. and J. H. Wanscher. 1983. Methuen Handbook of Colour, Third ed. Eyre Methuen. North Yorkshire, England. 243 pp.
Kwon, S. L., M. S. Park, S. Jang, Y. M. Lee, Y. M. Heo, J. H. Hong, H. Lee, Y. Jang, J.-H. Park, C. Kim, G.-H. Kim, Y. Woon Lim and J. J. Kim. 2021. The genus Arthrinium (Ascomycota, Sordariomycetes, Apiosporaceae) from marine habitats from Korea, with eight new species. IMA fungus 12(1): 13. DOI: https://doi.org/10.1186/s43008-021-00065-z DOI: https://doi.org/10.1186/s43008-021-00065-z
Kwon, S. L., M. Cho, Y. M. Lee, H. Lee, C. Kim, G. H. Kim and J. J. Kim. 2022. Diversity of the Bambusicolous Fungus Apiospora in Korea: Discovery of New Apiospora Species. Mycobiology 50(5): 302-316. DOI: https://doi.org/10.1080/12298093.2022.2133808 DOI: https://doi.org/10.1080/12298093.2022.2133808
Liao, J., W. Jiang, X. Wu, J. He, H. Li, T. Wang, L. Cheng, W. Chen and L. Mo. 2022. First report of Apiospora mold on sugarcane in China caused by Apiospora arundinis (Arthrinium arundinis). Plant Disease 106(3): 1058. DOI: https://doi.org/10.1094/PDIS-02-21-0386-PDN DOI: https://doi.org/10.1094/PDIS-02-21-0386-PDN
Liao, C., I. C. Senanayake, W. Dong, K. W. Thilini Chethana, K. Tangtrakulwanich, Y. Zhang and M. Doilom. 2023. Taxonomic and phylogenetic updates on Apiospora: Introducing four new species from Wurfbainia villosa and grasses in China. Journal of Fungi 9(11): 1087. DOI: https://doi.org/10.3390/jof9111087 DOI: https://doi.org/10.3390/jof9111087
NCBI. 2024. National Center for Biotechnology Information (NCBI). National Library of Medicine (US). https://www.ncbi.nlm.nih.gov (consulted june-october, 2024).
Park, H., J. C. Lee and A. H. Eom. 2020. First reports of five endophytic fungi isolated from leaves of plants inhabiting the Hansando Island in Korea. The Korean Journal of Mycology 48(3): 217-228. DOI: https://doi.org/10.4489/KJM.20200023
Paul, D., B. Moharana, S. B. Sawant, S. Sahu, S. Bahinapati, M. Das and V. Hallur. 2024. Breaking new ground: First case of keratitis by Apiospora. Indian Journal of Medical Microbiology 52: 100711. DOI: https://doi.org/10.1016/j.ijmmb.2024.100711 DOI: https://doi.org/10.1016/j.ijmmb.2024.100711
Phillips, A. J. L., A. Alves, A. Correia and J. Luque. 2005. Two new species of Botryosphaeria with brown, 1-septate ascospores and Dothiorella anamorphs. Mycologia 97: 513-529. DOI: https://doi.org/10.1080/15572536.2006.11832826 DOI: https://doi.org/10.3852/mycologia.97.2.513
Pintos, Á. and P. Alvarado. 2021. Phylogenetic delimitation of Apiospora and Arthrinium. Fungal Systematics and Evolution 7(1): 197-221. DOI: https://doi.org/10.3114/fuse.2021.07.10 DOI: https://doi.org/10.3114/fuse.2021.07.10
Pintos, Á., P. Alvarado, J. Planas and R. Jarling. 2019. Six new species of Arthrinium from Europe and notes about A. caricicola and other species found in Carex spp. hosts. MycoKeys 49: 15-48. DOI: https://doi.org/10.3897/mycokeys.49.32115 DOI: https://doi.org/10.3897/mycokeys..32115.figure10
Posada, D. 2008. jModelTest: phylogenetic model averaging. Molecular Biology and Evolution 25(7): 1253-1256. DOI: https://doi.org/10.1093/molbev/msn083 DOI: https://doi.org/10.1093/molbev/msn083
Rambaut, A. 2016. FigTree v1.4.3. Institute of Evolutionary Biology, University of Edinburgh. http://tree.bio.ed.ac.uk/software/figtree (consulted June-October, 2024).
Ronquist, F., M. Teslenko, P. van der Mark, D. L. Ayres, A. Darling, S. Hohna, B. Larget, L. Liu, A. Suchard and J. P. Huelsenbeck. 2012. MrBayes 3.2: efficient Bayesian phylogenetic inference and model choice across a large model space. Systematic Biology 61(3): 539-542. DOI: https://doi.org/10.1093/sysbio/sys029 DOI: https://doi.org/10.1093/sysbio/sys029
Shahim, S., N. F. Shekh and D. Dananjay. 2024. Biosynthesized AgNPs of Endophytic Fungus Arthrinium gutiae on Plant Growth. In: Balkhande, J. V. (ed.). Interdisciplinary Research in Life Sciences: A Path Towards Sustainability, Vol. 1. Advent Publishing. Mumbai, India. Pp. 65-71. DOI: https://doi.org/10.5281/zenodo.10682090
Tamura, K., G. Stecher and S. Kumar. 2021. MEGA11: molecular evolutionary genetics analysis version 11. Molecular Biology and Evolution 38(7): 3022-3027. DOI: https://doi.org/10.1093/molbev/msab120 DOI: https://doi.org/10.1093/molbev/msab120
Thambugala, K. M., K. D. Hyde, J. F. Zhang and Z. Y. Liu. 2018. Didymella eriobotryae sp. nov. (Didymellaceae) and Arthrinium arundinis (Apiosporaceae) from fruit of Eriobotrya japonica (loquat) in China. Phytotaxa 382(1): 136-147. DOI: https://doi.org/10.11646/phytotaxa.382.1.8 DOI: https://doi.org/10.11646/phytotaxa.382.1.8
Tian, X., S. C. Karunarathna, A. Mapook, I. Promputtha, J. Xu, D. Bao and S. Tibpromma. 2021. One new species and two new host records of Apiospora from bamboo and maize in northern Thailand with thirteen new combinations. Life 11(10): 1071. DOI: https://doi.org/10.3390/life11101071 DOI: https://doi.org/10.3390/life11101071
Wang, H., B. O. Umeokoli, P. Eze, C. Heering, C. Janiak, W. E. G. Müller, R. S. Orfali, R. Hartmann, H. Dai, W. Lin, Z. Liu and P. Proksch. 2017. Secondary metabolites of the lichen-associated fungus Apiospora montagnei. Tetrahedron Letters 58(17): 1702-1705. DOI: https://doi.org/10.1016/j.tetlet.2017.03.052 DOI: https://doi.org/10.1016/j.tetlet.2017.03.052
Wang, M., X. M. Tan, F. Liu and L. Cai. 2018. Eight new Arthrinium species from China. MycoKeys 34: 1-24. DOI: https://doi.org/10.3897/mycokeys.34.24221 DOI: https://doi.org/10.3897/mycokeys.34.24221
White T. J., T. Bruns, S. Lee and J. Taylor. 1990. Amplification and direct sequencing of fungal ribosomal RNA genes for phylogenetics. In: Innis, M. A, D. H. Gelfand, J. J. Sninsky and T. J. White (eds.). PCR protocols: a guide to methods and applications. Academic Press. New York, USA. Pp. 315-322. DOI: https://doi.org/10.1016/b978-0-12-372180-8.50042-1 DOI: https://doi.org/10.1016/B978-0-12-372180-8.50042-1
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