Contribución a la taxonomía y filogenia del género Pisolithus (Sclerodermataceae, Boletales) en México
DOI:
https://doi.org/10.21829/abm132.2025.2430Palabras clave:
Basidiomycota, código de barras, hongos de zonas secas, micorrizasResumen
Antecedentes y Objetivos: El género Pisolithus se caracteriza por sus basidiomas angiocárpicos, que presentan una gleba pulverulenta compuesta por peridiolos, maduración apical y basidiosporas equinuladas. En México, se han citado dos especies estrechamente relacionadas con base exclusivamente en su morfología: P. tinctorius y P. arhizus, asociadas con Pinus, Quercus, Carya and Eucalyptus. Sin embargo; se ha señalado que ninguna de estas especies se asocia con el eucalipto y P. arhizus se distribuye solo en Eurasia, con base en secuencias ITS. Este estudio busca contribuir a la taxonomía y filogenia del género Pisolithus en México mediante la caracterización de especímenes de Pisolithus de zonas templadas y áridas, con base en la morfología y las secuencias de código de barras ITS de especímenes de fungarios, así como secuencias de metabarcoding del suelo.
Métodos: Se caracterizaron macro y microscópicamente 32 especímenes del herbario MEXU mediante microscopía óptica y electrónica de barrido. Se utilizó literatura especializada para la identificación morfológica. El ADN se extrajo con un protocolo CTAB al 3%. La región ITS se amplificó con los pares de cebadores ITS5 e ITS4. Los análisis filogenéticos incluyeron 21 secuencias recién generadas, secuencias metagenómicas del suelo y secuencias depositadas en el NCBI, y se realizaron mediante métodos de máxima verosimilitud e inferencia bayesiana.
Resultados clave: Se confirma la presencia de P. tinctorius asociada con Pinus, Quercus y Carya illinoinensis. Pisolithus albus, un nuevo registro para México, se distingue por su asociación con Eucalyptus sp., un exoperidio blanquecino, gleba ocrácea y basidiosporas equinadas con espinas cortas y aisladas de hasta 1 µm de altura. El análisis filogenético respalda la identidad de las colecciones mexicanas.
Conclusiones: Entre las muestras mexicanas analizadas, se identificaron taxonómicamente dos especies bien definidas de Pisolithus, P. albus y P. tinctorius. Con base en el material considerado en este trabajo, no se encontró ninguna que correspondiera a P. arhizus.
Descargas
Citas
Abdel-Aziz, A. E. and M. S. Bakhit. 2023. Pisolithus albus (Sclerodermataceae), a first record from Egypt. Plant and Fungal Systematics 68(1): 232-238. DOI: https://doi.org/10.35535/pfsyst-2023-0004 DOI: https://doi.org/10.35535/pfsyst-2023-0004
Albertini, J. B. and L. D. Schweinitz. 1805. Conspectus Fungorum in Lusatiae Superioris Agro Niskiensi Crescentium e Methodo Persooniana. Sumtibus Kummerianis. Leipzig, Germany. Pp. 376. DOI: https://doi.org/10.5962/bhl.title.3601 DOI: https://doi.org/10.5962/bhl.title.3601
Anderson, I. C., S. M. Chambers and J. Cairney. 1998. Molecular determination of genetic variation in Pisolithus isolates from a defined region in New South Wales, Australia. New Phytologist 138(1): 151-162. DOI: https://doi.org/10.1046/j.1469-8137.1998.00894.x DOI: https://doi.org/10.1046/j.1469-8137.1998.00894.x
Anderson, I. C., S. M. Chambers and J. W. G. Cairne. 2001. ITS–RFLP and ITS sequence diversity in Pisolithus from central and eastern Australian sclerophyll forests. Mycological Research 105(11): 1304-1312. DOI: https://doi.org/10.1017/S0953756201005044 DOI: https://doi.org/10.1017/S0953756201005044
Ayala, N. and G. Guzmán. 1984. Los hongos de la Península de Baja California, I. Las especies conocidas. Boletín de Sociedad Mexicana de Micología 19: 73-91.
Bautista-Hernández, S., T. Raymundo, E. Aguirre-Acosta, M. Contreras-Pacheco, L. Romero-Bautista and R. Valenzuela. 2018. Agaricomycetes gasteroides del bosque mesófilo de montaña de la Huasteca Alta Hidalguense, México. Acta Botanica Mexicana 123: 21-36. DOI: https://doi.org/10.21829/abm123.2018.1266 DOI: https://doi.org/10.21829/abm123.2018.1266
Burgess, T., N. Malajczuk and B. Dell. 1995. Variation in Pisolithus based on basidiome and basidiospore morphology, culture characteristics and analysis of polypeptides using 1D-SDS-PAGE. Mycological Research 99(1): 1-13. DOI: https://doi.org/10.1016/S0953-7562(09)80309-2 DOI: https://doi.org/10.1016/S0953-7562(09)80309-2
Calonge, F. D., G. Guzmán and F. Ramírez-Guillén. 2004. Observaciones sobre los Gasteromycetes de México depositados en los Herbarios XAL y XALU. Boletin de la Sociedad Micológica de Madrid 28: 337-371.
Chambers, S. M. and J. W. Cairney. 1999. Pisolithus. In: Cairney, J. W. and S. M. Chambers (eds.). Ectomycorrhizal fungi. Key genera in profile. Springer. Berlin, Germany. Pp. 1-31. DOI: https://doi.org/10.1007/978-3-662-06827-4_1
Cifuentes, J., M. Villegas and L. Pérez-Ramírez. 1986. Hongos. In: Lot, A. and F. Chiang (eds.). Manual de Herbario. Consejo Nacional de la Flora de México, A.C. México, D.F., México. Pp. 55-64.
Coker, W. C., and J. N. Couch. 1928. The Gasteromycetes of the Eastern United States and Canada. Chapel Hill, The University of North Carolina Press. Chapel Hill, United States of America. 195 pp., 123 tabs. DOI: https://doi.org/10.5962/bhl.title.5712
Cooke, M. C. 1891. Australian Fungi. Grevillea 20(93): 4-7.
Crous, P. W., M. J. Wingfield, D. M. Richardson, J. J. Leroux, D. Strasberg, J. Edwards, F. Roets, V. Hubka, P. W. J. Taylor, M. Heykoop, M. P. Martín, G. Moreno, D. A. Sutton, N. P. Wiederhold, C. W. Barnes, J. R. Carlavilla, J. Gené, A. Giraldo, V. Guarnaccia, J. Guarro, M. Hernández-Restrepo, M. Kolařík, J. L. Manjón, I. G. Pascoe, E. S. Popov, M. Sandoval-Denis, J. H. C. Woudenberg, K. Acharya, A. V. Alexandrova, P. Alvarado, R. N. Barbosa, I. G. Baseia, R. A. Blanchette, T. Boekhout, T. I. Burgess, J. F. Cano-Lira, A. Čmoková, R. A. Dimitrov, M. Yu. Dyakov, M. Dueñas, A. K. Dutta, F. Esteve-Raventós, A. G. Fedosova, J. Fournier, P. Gamboa, D. E. Gouliamova, T. Grebenc, M. Groenewald, B. Hanse, G. E. ST. J. Hardy, B. W. Held, Ž. Jurjević, T. Kaewgrajang, K. P. D. Latha, L. Lombard, J. J. Luangsa-ard, P. Lysková, N. Mallátová, P. Manimohan, A. N. Miller, M. Mirabolfathy, O. V. Morozova, M. Obodai, N. T. Oliveira, M. E. Ordóñez, E. C. Otto, S. Paloi, S. W. Peterson, C. Phosri, J. Roux, W. A. Salazar, A. Sánchez, G. A. Sarria; H. D. Shin, B. D. B. Silva, G. A. Silva, M. TH. Smith, C. M, Souza-Motta, A. M. Stchigel, M. M. Stoilova-Disheva, M. A. Sulzbacher, M. T. Telleria, C. Toapanta, J. M, Traba, N. Valenzuela-Lopez, R. Watling and J. Z. Groenewald. 2016. Fungal Planet description sheets: 400-468. Persoonia-Molecular Phylogeny and Evolution of Fungi 36(1): 316-458. DOI: https://doi.org/10.3767/003158516X692185 DOI: https://doi.org/10.3767/003158516X692185
Crous, P. W., Ž. Jurjević, S. Balashov, S. De la Peña-Lastra, A. Mateos, U. Pinruan, A. Rigueiro-Rodríguez, E. R. Osieck, A. Altés, P. Czachura, F. Esteve-Raventós, S. Gunaseelan, M. Kaliyaperumal, E. Larsson, J. J. Luangsa-ard, G. Moreno, F. Pancorbo, M. Piątek, S. Sommai, S. Somrithipol, M. Asif, G. Delgado, A. Flakus, T. Illescas, K. Kezo, P. Khamsuntorn, A. Kubátová, R. Labuda, C. Lavoise, T. Lebel, P. Lueangjaroenkit, J. G. Maciá-Vicente, A. Paz, M. Saba, R. G. Shivas, Y. P. Tan, M. J. Wingfield, T. Aas, B. Abramczyk, A. M. Ainsworth, A. Akulov, P. Alvarado, F. Armada, B. Assyov, R. Avchar, M. Avesani, J. L. Bezerra, J. D. Bhat, P. Bilański, D. S. Bily, F. Boccardo, F. Bozok, J. C. Campos, S. Chaimongkol, N. Chellappan, M. M. Costa, M. Dalecká, V. Darmostuk, V. Daskalopoulos, J. Dearnaley,, B.T.M. Dentinger, N.I. De Silva, D. Dhotre, J. R. Carlavilla, C. Doungsa-ard, F. Dovana, A. Erhard, L. O. Ferro, S. C. Gallegos, C. E. Giles, G. Gore, M. Gorfer, F. E. Guard, S.-Å. Hanson, P. Haridev, R. Jankowiak, S. N. Jeffers, H. Kandemir, A. Karich, K. Kisło, L. Kiss, I. Krisai-Greilhuber, K. P. D. Latha, M. Lorenzini, S. Lumyong, P. Manimohan, J. L. Manjón, F. Maula, E. Mazur, N. L. S. Mesquita, K. Młynek, S. Mongkolsamrit, P. Morán, R. Murugadoss, M. Nagarajan, S. Nalumpang, W. Noisripoom, S. Nosalj, Q. S Novaes, M. Nowak, J. Pawłowska, M. Peiger, O. L. Pereira, A. Pinto, M. Plaza, E. Polemis, A. Polhorský, D. O. Ramos, M. Raza, M. Rivas-Ferreiro, P. Rodriguez-Flakus, M. Ruszkiewicz-Michalska, A. Sánchez, A. Santos, A. Schüller, P. A. Scott, İ. Şen, D. Shelke, L. Śliwa, H. Solheim, H. Sonawane, D. Strašiftáková, M. Stryjak-Bogacka, M. Sudsanguan, N. Suwannarach, L. M. Suz, K. Syme, H. Taşkın, D. S. Tennakoon, P. Tomka, N. Vaghefi, V. Vasan, J. Vauras, D. Wiktorowicz, M. Villarreal, A. Vizzini, M. Wrzosek, X. Yang, W. Yingkunchao, G. Zapparoli, G. I. Zervakis and J. Z. Groenewald. 2024. Fungal Planet description sheets: 1614-1696. Fungal systematics and evolution 13(1): 183-440. DOI: https://doi.org/10.3114/fuse.2024.13.11 DOI: https://doi.org/10.3114/fuse.2024.13.11
Díaz-Barriga, H., F. Guevara-Féfer and R. Valenzuela. 1988. Contribución al conocimiento de los macromicetos del estado de Michoacán. Acta Botanica Mexicana 2: 21-44. DOI: https://doi.org/10.21829/abm2.1988.564 DOI: https://doi.org/10.21829/abm2.1988.564
Díez, J., B. Anta, J. L. Manjón and M. Honrubia. 2001. Genetic variation of Pisolithus isolates associated with native hosts and exotic eucalyptus in the western Mediterranean region. New Phytologist 149(3): 577-587. DOI: https://doi.org/10.1046/j.1469-8137.2001.00036.x DOI: https://doi.org/10.1046/j.1469-8137.2001.00036.x
Duponnois, R. and A. M. Bâ. 1999. Growth stimulation of Acacia mangium Willd by Pisolithus sp. in some Senegalese soils. Forest Ecology and Management 119(1-3): 209-215. DOI: https://doi.org/10.1016/S0378-1127(98)00524-6 DOI: https://doi.org/10.1016/S0378-1127(98)00524-6
Eddine Bakkali Yakhlef, S., Mousain, R. Duponnois, M. Ducousso, A. Belkouri, B. Kerdouh, M. M. Perrineau and M. Abouroh. 2009. Molecular phylogeny of Pisolithus species from Moroccan forest woodlands. Symbiosis 49: 157-162. DOI: https://doi.org/10.1007/s13199-009-0043-9 DOI: https://doi.org/10.1007/s13199-009-0043-9
Esqueda, M., T. Quintero Ruiz, E. Pérez-Silva and A. Aparicio Navarro. 1990. Nuevos registros de Gasteromycetes en Sonora. Revista Mexicana de Micología 6: 91-104.
Esqueda, M., E. Pérez-Silva, T. Herrera and G. Moreno. 1998. Adiciones al conocimiento de los Gasteromicetos de Sonora, México. Revista Mexicana de Micología 14: 41-52.
Esqueda, M., E. Pérez-Silva, T. Herrera, M. Coronado-Andrade and A. Estrada-Torres. 2000. Composición de Gasteromicetos en un gradiente de vegetación de Sonora, México. Anales del Instituto de Biología, Universidad Nacional Autónoma de México, Serie Botánica 71: 39-62.
Frutis, I. and G. Guzmán. 1983. Contribución al conocimiento de los hongos del estado de Hidalgo. Boletín de la Sociedad Mexicana de Micología 18: 219-266.
García-Rodríguez, J. L., J. Pérez-Moreno, A. Aldrete, V. M. Cetina-Alcalá and H. Vaquera-Huerta. 2006. Caracterización del hongo silvestre ectomicorrízico Pisolithus tinctorius (Pers.) Coker et Couch en cultivo y en simbiosis con Eucalipto y Pino. Agrociencia 40(5): 665-676.
Gargano, M. L., S. Maisano and G. Venturella. 2018. Pisolithus albus, a new record for Italy. Field Mycology 19(3): 86-89. DOI: https://doi.org/10.1016/j.fldmyc.2018.07.008 DOI: https://doi.org/10.1016/j.fldmyc.2018.07.008
Garza Ocañas, F., J. García Jiménez, G. Guevara Guerrero, M. Quiñonez Martínez and M. I. Yáñez Díaz. 2023. Especies de macrohongos en matorrales del Noreste de México. Revista Mexicana De Ciencias Forestales 14(79): 213-236. DOI: https://doi.org/10.29298/rmcf.v14i79.1365 DOI: https://doi.org/10.29298/rmcf.v14i79.1365
GenBank. 2025. National Center for Biotechnology Information http://www.ncbi.nlm.nih.gov/genbank/ (consulted January, 2025).
Geneious Prime. 2025. Geneious Prime ver. 2025.0.3 https://www.geneious.com (consulted January, 2025).
Gomes, E. A., L. M. Abreu, A. C. Borges and E. F. Araújo. 2000. ITS sequences and mitochondrial DNA polymorphism in Pisolithus isolates. Mycology Research 104(8): 911-918. DOI: https://doi.org/10.1017/S0953756200002586 DOI: https://doi.org/10.1017/S0953756200002586
Guzmán, G. and T. Herrera. 1969. Macromicetos de las zonas áridas de México, II. Gasteromicetos. Boletín de la Sociedad Mexicana de Micología 40: 1-92.
Guzmán, G. and T. Herrera. 1973. Especies de macromicetos citadas de México, IV. Gasteromicetos. Boletín de la Sociedad Mexicana de Micología 7: 105-119.
Hernández-Navarro, E., M. Esqueda, M. Lizárraga, D. López-Peña and A. Gutiérrez. 2015. Registros nuevos de hongos gasteroides y mixomicetes de la Sierra de Mazatán, Sonora, México. Scientia Fungorum 3(42): 45-52.
Herrera, T. 1964. Clasificación, descripción y relaciones ecológicas de Gasteromicetos del Valle de México. Anales del Instituto de Biología, Universidad Nacional Autónoma de México 35: 9-43.
Herrera, T., E. Pérez-Silva and E. Aguirre. 1989. Distribución y hábitat de Sclerodermatales de México. Revista de la Sociedad Mexicana de Historia Natural 40: 59-64.
Hitchcock, C. J., S. M. Chambers and J. W. Cairney. 2011. Genetic population structure of the ectomycorrhizal fungus Pisolithus microcarpus suggests high gene flow in south-eastern Australia. Mycorrhiza 21(2): 131-137. DOI: https://doi.org/10.1007/s00572-010-0317-3 DOI: https://doi.org/10.1007/s00572-010-0317-3
Hosaka, K. 2009. Phylogeography of the genus Pisolithus revisited with some additional taxa from New Caledonia and Japan. Bulletin of the National Museum of Nature and Science 35(3): 151-167.
Huelsenbeck, J. P. and F. Ronquist. 2001. MRBAYES: Bayesian inference of phylogenetic trees. Bioinformatics 17(8): 754-755. DOI: https://doi.org/10.1093/bioinformatics/17.8.754 DOI: https://doi.org/10.1093/bioinformatics/17.8.754
Index Fungorum. 2024. Index Fungorum, database. http://www.indexfungorum.org/names/Names.asp (consulted November, 2024).
Jaouani, A., M. L. Gargano, Z. Ouali, I. Sbissi, R. Compagno and G. Venturella. 2015. Pisolithus albus (Sclerodermataceae), a new record for Tunisia. Flora Mediterranea 25: 73-78. DOI: https://doi.org/10.7320/FlMedit25.073
Jourand, P., M. Ducousso, C. Loulergue-Majorel, L. Hannibal, S. Santoni, Y. Prin and Lebrun, M. 2010. Ultramafic soils from New Caledonia structure Pisolithus albus in ecotype. FEMS Microbiology and Ecology 72(2): 238-249. DOI: http://dx.doi.org/10.1111/j.1574-6941.2010.00843.x DOI: https://doi.org/10.1111/j.1574-6941.2010.00843.x
Kalyaanamoorthy, S., B. Q. Minh, T. K. F. Wong, A. von Haeseler and L. S. Jermiin. 2017. ModelFinder: fast model selection for accurate phylogenetic estimates. Nature Methods 14(6): 587-589. DOI: https://doi.org/10.1038/nmeth.4285. DOI: https://doi.org/10.1038/nmeth.4285
Kanchanaprayudh, J., T. Hogetsu, Z. Zhou, S. Yomyart and P. Sihanonth. 2003. Molecular phylogeny of ectomycorrhizal Pisolithus fungi associated with pine, dipterocarp, and Eucalyptus trees in Thailand. Mycoscience 44(4): 287-294. DOI: https://doi.org/10.1007/s10267-003-0110-7 DOI: https://doi.org/10.1007/S10267-003-0110-7
Kasuya, M. C., I. Coelho, Y. Tamai, T. Miyamoto and T. Yajima. 2008. Morphological and molecular characterization of Pisolithus occurring in Hokkaido Island, Northern Japan. Mycoscience 49(5): 334-338. DOI: https://doi.org/10.1007/S10267-008-0420-X DOI: https://doi.org/10.1007/S10267-008-0420-X
Katoh, K. J. Rozewicki and K. D. Yamada. 2019. MAFFT online service: multiple sequence alignment, interactive sequence choice and visualization. Briefings in Bioinformatics 20(4): 1160-1166. DOI: https://doi.org/10.1093/bib/bbx108 DOI: https://doi.org/10.1093/bib/bbx108
Lampky, J. R. and J. E. Peterson. 1963. Pisolithus tinctorius associated with Pines in Missouri. Mycologia 55(5): 675-678. DOI: https://doi.org/10.2307/3756442 DOI: https://doi.org/10.2307/3756442
Lebel, T., S. Pennycook and M. Barrett. 2018. Two new species of Pisolithus (Sclerodermataceae) from Australasia, and an assessment of the confused nomenclature of P. tinctorius. Phytotaxa 348(3): 163-186. DOI: https://doi.org/10.11646/phytotaxa.348.3.1 DOI: https://doi.org/10.11646/phytotaxa.348.3.1
Leonard, P. and S. J. McMullan-Fisher. 2013. Pisolithus in Queensland. Fungimap Newsletter 49: 4-8.
Leonard, P. L., S. J. McMullan-Fisher and T. Lebel. 2013. Pisolithus croceorrhizus P. Leonard & McMullan-Fisher sp. nov. from Queensland, Australia and New Caledonia. Australasian Mycologist 31: 25-29.
Maddison, W. P. and D. R. Maddison. 2023. Mesquite: a modular system for evolutionary analysis, ver. 3.81 http://www.mesquiteproject.org (consulted March, 2025).
Malajczuk, N. and W. Dunstan. 2002. Persistence of some Australian Pisolithus species introduced to eucalypt plantations in China. Forest Ecology and Management 139(3): 271-281. DOI: https://doi.org/10.1016/S0378-1127(01)00750-2 DOI: https://doi.org/10.1016/S0378-1127(01)00750-2
Martin, F., C. Delaruelle and M. Ivory. 1998. Genetic variability in intergenic spacers of ribosomal DNA in Pisolithus isolates associated with pine, eucalyptus and Afzelia in lowland Kenyan forests. New Phytologist 139(2): 341-352. DOI: https://doi.org/10.1046/j.1469-8137.1998.00195.x DOI: https://doi.org/10.1046/j.1469-8137.1998.00195.x
Martin, F., J. Díez, B. Dell and C. Delaruelle. 2002. Phylogeography of the ectomycorrhizal Pisolithus species as inferred from nuclear ribosomal DNA ITS sequences. New Phytologist 153(2): 345-357. DOI: https://doi.org/10.1046/j.0028-646X.2001.00313.x DOI: https://doi.org/10.1046/j.0028-646X.2001.00313.x
Martín, M. P., F. Durán, C. Phosri and R. Watling. 2013. A new species of Pisolithus from Spain. Mycotaxon 124(1): 149-154. DOI: https://doi.org/10.5248/124.149 DOI: https://doi.org/10.5248/124.149
Marx, D. H. 1977. Tree host range and world distribution of the ectomycorrhizal fungus Pisolithus tinctorius. Canadian Journal of Microbiology 23(3): 217-223. DOI: https://doi.org/10.1139/m77-033 DOI: https://doi.org/10.1139/m77-033
Montagner, D. F., G. Coelho, A. O. Silveira, D. B. Baldoni and Z. Antoniolli. 2015. Morphological and molecular analyses in Scleroderma (Basidiomycota) associated with exotic forests in Pampa biome, southern Brazil. Mycosphere 6(3): 337-344. DOI: https://doi.org/10.5943/mycosphere/6/3/9 DOI: https://doi.org/10.5943/mycosphere/6/3/9
Moreno, G., M. Lizárraga, M. Esqueda and M. L. Coronado. 2010. Contribution to the study of gasteroid and secotioid fungi of Chihuahua, Mexico. Mycotaxon 112(1): 291-315. DOI: https://doi.org/10.5248/112.291 DOI: https://doi.org/10.5248/112.291
Moyersoen, B., R. E. Beever and F. Martin. 2003. Genetic diversity of Pisolithus in New Zealand indicates multiple long-distance dispersal from Australia. New Phytologist 160(3): 569-579. DOI: htts://doi.org/10.1046/j.1469-8137.2003.00908.x DOI: https://doi.org/10.1046/j.1469-8137.2003.00908.x
Nava Mora, R. and R. Valenzuela Garza. 1997. Los macromicetos de la Sierra de Nanchititla, I. Polibotánica 5: 21-36.
NCBI. 2024. National Center for Biotechnology Information (NCBI). National Library of Medicine (US). https://www.ncbi.nlm.nih.gov (consulted june-october, 2024).
Palmer, J. M., D. L. Lindner and T. J. Volk. 2008. Ectomycorrhizal characterization of an American chestnut (Castanea dentata)-dominated community in Western Wisconsin. Mycorrhiza 19(1): 27-36. DOI: https://doi.org/10.1007/s00572-008-0200-7 DOI: https://doi.org/10.1007/s00572-008-0200-7
Pardavé, L. M. 1991. Gasteromycetes del estado de Aguascalientes. Revista Mexicana de Micología 7: 71-78.
Patel, R. and K. Rajput. 2023. Molecular and morphological studies on some gasteroid (Basidiomycota) fungi from Western India. Asian Journal of Mycology 6(2): 72-88. DOI: https://doi.org/10.5943/ajom/6/2/6 DOI: https://doi.org/10.5943/ajom/6/2/6
Pérez-Silva, E., M. Esqueda and T. Herrera. 1994. Contribución al conocimiento de los Gasteromicetos de Sonora. Revista Mexicana de Micología 10: 77-101.
Phosri, C., M. P. Martín, N. Suwannasai, P. Sihanonth and R. Watling. 2012. Pisolithus: a new species from southeast Asia and a new combination. Mycotaxon 120(1): 195-208. DOI: https://doi.org/10.5248/120.195 DOI: https://doi.org/10.5248/120.195
Phosri, C., M. P. Martín, R. Watling, M. Jeppson and P. Sihanonth. 2009. Molecular phylogeny and re-assessment of some Scleroderma spp. (Gasteromycetes). Anales del Jardín Botánico de Madrid 66(S1): 83-91. DOI: https://doi.org/10.3989/ajbm.2199 DOI: https://doi.org/10.3989/ajbm.2199
Phosri, C., M. P. Martín and R. Watling. 2013. Astraeus: hidden dimensions. IMA Fungus 4: 347-356. DOI: https://doi.org/10.5598/imafungus.2013.04.02.13 DOI: https://doi.org/10.5598/imafungus.2013.04.02.13
Rambaut, A. 2018. FigTree: tree figure drawing tool version 1.4.4. http://tree.bio.ed.ac.uk/software/figtree- (consulted March, 2025).
Reddy, M. S., S. Singla, K. Natarajan and G. Senthilarasu. 2005. Pisolithus indicus, a new species of ectomycorrhizal fungus associated with Dipterocarps in India. Mycologia 97(4): 838-843. DOI: https://doi.org/10.3852/mycologia.97.4.838 DOI: https://doi.org/10.3852/mycologia.97.4.838
Rodríguez Alcántar, O., D. Figueroa García and M. de J. Herrera-Fonseca. 2019. Catálogo de los hongos de San Sebastián del Oeste, Jalisco, México. Acta Botanica Mexicana 126: e1364. DOI: https://doi.org/10.21829/abm126.2019.1364 DOI: https://doi.org/10.21829/abm126.2019.1364
Rusevska, K., M. Karadelev, C. Phosri, M. Dueñas, M. T. Telleria, R. Watling and M. P. Martín. 2015. DNA barcoding is an effective tool for differentiating Pisolithus species from Macedonia. Mycotaxon 130(4): 1007-1016. DOI: https://doi.org/10.5248/130.1007 DOI: https://doi.org/10.5248/130.1007
Sáenz-Hidalgo, H. K., J. L. Jacobo-Cuellar, E. Zúñiga-Rodríguez, G. D. Avila-Quezada, V. Olalde-Portugal, A. Hashem and E. F. Abd_Allah. 2023. Soil Structure and Ectomycorrhizal Root Colonization of Pecan Orchards in Northern Mexico. Journal of Fungi 9(4): 440. DOI: https://doi.org/10.3390/jof9040440 DOI: https://doi.org/10.3390/jof9040440
Schoch, C. L., K. A. Seifert, S. Huhndorf, V. Robert, J. L. Spouge, C. A. Levesque, W. Chen and Fungal Barcoding Consortium. 2012. Nuclear ribosomal internal transcribed spacer (ITS) region as a universal DNA barcode marker for Fungi. Proceedings of the National Academy of Sciences 109(16): 6241-6246. DOI: https://doi.org/10.1073/pnas.1117018109 DOI: https://doi.org/10.1073/pnas.1207508109
Sebastiana, M., A. Corrêa, P. Castro and M. Ramos. 2020. Pisolithus. In: Amaresan, N., K. Annapurna, A. Sankaranarayanan, M. Senthil Kumar and K. Kumar (eds.). Beneficial microbes in agro-ecology: bacteria and fungi. Elsevier. Philadelphia, USA. Pp. 707-726. DOI: https://doi.org/10.1016/B978-0-12-823414-3.00036-8 DOI: https://doi.org/10.1016/B978-0-12-823414-3.00036-8
Singla, S., M. S. Reddy, R. Marmeisse and G. Gay. 2004. Genetic variability and taxonomic position of ectomycorrhizal fungus Pisolithus from India. Microbiological Research 159(3): 203-210. DOI: https://doi.org/10.1016/j.micres.2004.03.003 DOI: https://doi.org/10.1016/j.micres.2004.03.003
Tedersoo, L., V. Mikryukov, S. Anslan, M. Bahram, A. Nasir Khalid, A. Corrales, A. Agan, A. M. Vasco-Palacios, A. Saitta, A. Antonelli, A. C. Rinaldi, A. Verbeken, B. P. Sulistyo, B. Tamgnoue, B. Furneaux, C. Duarte Ritter, C. Nyamukondiwa, C. Sharp, C. Marín, D. Q. Dai, D. Gohar, D. Sharmah, E. Machteld Biersma, E. K. Cameron, E. De Crop, E. Otsing, E. A. Davydov, F. E. Albornoz, F. Q. Brearley, F. Buegger, G. Gates, G. Zahn, G. Bonito, I. Hiiesalu, I. Hiiesalu, I. Zettur, I. C. Barrio, J. Pärn, J. Heilmann-Clausen, J. Ankuda, J. Y. Kupagme, J. Sarapuu, J. G. Maciá-Vicente, J D. Fovo, J. Geml, J. M. Alatalo, J. Alvarez-Manjarrez, J. Monkai, K. Põldmaa, K. Runnel, K. Adamson, K. A. Bråthen, K. Pritsch, K. I. Tchan, K. Armolaitis, K. D. Hyde, K. K. Newsham, K. Panksep, L. A. Adebola, L. J. Lamit, M. Saba, M. E. da Silva Cáceres, M. Tuomi, M. Gryzenhout, M. Bauters, M. Bálint, N. Wijayawardene, N. Hagh-Doust, N. S. Yorou, O. Kurina, P. E. Mortimer, P. Meidl, R. Henrik Nilsson, R. Puusepp, R. Casique-Valdés, R. Drenkhan, R. Garibay-Orijel, R. Godoy, S. Alfarraj, S. Rahimlou, S. Põlme, S. V. Dudov, S. Mundra, T. Ahmed, T. Netherway, T. W. Henkel, T. Roslin, V. E. Fedosov, V. G. Onipchenko, W. A. Erandi Yasanthika, Y. Woon Lim, M. Piepenbring, D. Klavina, U. Kõljalg and K. Abarenkov. 2021. The Global Soil Mycobiome consortium dataset for boosting fungal diversity research. Fungal Diversity 111: 573-588. DOI: https://doi.org/10.1007/s13225-021-00493-7 DOI: https://doi.org/10.1007/s13225-021-00493-7
Thomas, S. R., W. Dunstan, B. Dell, J. Trappe and N. Malajczuk. 2003. Pisolithus hypogaeus sp. nov.: A hypogeous representative of the genus Pisolithus from Western Australia. Mycotaxon 87: 405-410.
Trifinopoulos, J., L. T. Nguyen, A. V. Haeseler and B. Q. Minh. 2016. W-IQ-TREE: a fast online phylogenetic tool for maximum likelihood analysis. Nucleic Acids Research 44(W1): W232-W235. DOI: https://doi.org/10.1093/nar/gkw256 DOI: https://doi.org/10.1093/nar/gkw256
Urista, E., J. García and J. Castillo. 1985. Algunas especies de Gasteromycetes del Norte de México. Revista Mexicana de Micología 1: 471-523.
Welden, A. L. and G. Guzmán. 1978. Lista preliminar de los hongos, líquenes y mixomicetos de las regiones de Uxpanapa, Coatzacoalcos, Los Tuxtlas, Papaloapan y Xalapa (parte de los estados de Veracruz y Oaxaca). Boletín de la Sociedad Mexicana de Micología 12: 59-102.
Wickham, H. and W. Chang. 2008. ggplot2: An implementation of the Grammar of Graphics. R package ver. 0.7. http://CRAN. R-project. org/package= ggplot2 (consulted July, 2025).
Wilson, A. W., M. Binder and D. S. Hibbett. 2011. Effect of gasteroid fruiting body morphology on diversification rate in three independent clades of fungi estimated using binary state speciation and extinction analysis. Evolution 65(5): 1305-1322. DOI: https://doi.org/10.1111/j.1558-5646.2010.01214.x DOI: https://doi.org/10.1111/j.1558-5646.2010.01214.x
Zarco, J. 1986. Estudio de la distribución ecológica de los hongos (principalmente macromicetos) en el Valle de México, basado en los especímenes depositados en el herbario ENCB. Revista Mexicana de Micología 2: 41-72.
Descargas
Publicado
Cómo citar
-
Resumen614
-
PDF 213
-
EPUB 10
-
XML10
Número
Sección
Licencia
Esta obra está bajo una licencia internacional Creative Commons Atribución-NoComercial 4.0.
Los autores/as que publiquen en esta revista aceptan las siguientes condiciones:
De acuerdo con la legislación de derechos de autor, Acta Botanica Mexicana reconoce y respeta el derecho moral de los autores, así como la titularidad del derecho patrimonial, el cual será cedido a la revista para su difusión en acceso abierto. Acta Botanica Mexicana no realiza cargos a los autores por enviar y procesar artículos para su publicación.
Todos los textos publicados por Acta Botanica Mexicana –sin excepción– se distribuyen amparados bajo la licencia Creative Commons 4.0 Atribución-No Comercial (CC BY-NC 4.0 Internacional), que permite a terceros utilizar lo publicado siempre que mencionen la autoría del trabajo y a la primera publicación en esta revista.
Los autores/as pueden realizar otros acuerdos contractuales independientes y adicionales para la distribución no exclusiva de la versión del artículo publicado en Acta Botanica Mexicana (por ejemplo incluirlo en un repositorio institucional o publicarlo en un libro) siempre que indiquen claramente que el trabajo se publicó por primera vez en Acta Botanica Mexicana.
Para todo lo anterior, el corrector de originales le solicitará junto con la revisión de galeras, que expida su Carta-Cesión de la Propiedad de los Derechos de la primera publicación debidamente requisitado y firmado por el autor(es). Esta carta se debe enviar por correo electrónico en archivo pdf al correo: acta.botanica@inecol.mx (Carta-Cesión de Propiedad de Derechos de Autor).
