Caracterización fitoquímica, antioxidante, nutricional y toxicidad en cinco especies comestibles de Asclepiadoideae (Apocynaceae) del noroeste de México

Autores/as

DOI:

https://doi.org/10.21829/abm132.2025.2462

Palabras clave:

fibra dietaria, Funastrum, Gonolobus, Marsdenia, plantas silvestres comestibles, Ruehssia

Resumen

Antecedentes y Objetivos: Apocynaceae es una familia altamente diversa que se caracteriza por incluir tanto a especies altamente tóxicas como medicinales y comestibles. Sin embargo, a la fecha existen muy pocos estudios que demuestren la seguridad o toxicidad del consumo de sus especies comestibles o de sus aportes nutricionales. El presente trabajo tuvo como objetivos evaluar el contenido de fitoquímicos, toxicidad, actividad antioxidante y composición proximal de frutos e inflorescencias de cinco especies de Apocynaceae del noroeste de México: Funastrum clausum, F. heterophyllum, F. pannosum, Gonolobus naturalistae y Ruehssia tholiformis.
Métodos: Se realizó un tamizaje fitoquímico para identificar familias de compuestos potencialmente tóxicos. La toxicidad se evaluó en modelos de Artemia salina y ratón. Los resultados se compararon con Asclepias curassavica. El contenido de fenólicos totales, flavonoides totales y actividad antioxidante (ABTS, DPPH y ORAC) se evaluaron por métodos espectrofotométricos. El análisis proximal se determinó mediante las metodologías de la AOAC y para la fibra dietaria se empleó un kit comercial.
Resultados clave: A diferencia de A. curassavica, las especies evaluadas carecen de fitoquímicos potencialmente tóxicos (p.ej., alcaloides o antracénicos) y fueron inocuas en los dos modelos evaluados. El mayor contenido de compuestos fenólicos y actividad antioxidante se encontró para los frutos de Funastrum clausum y las inflorescencias de F. pannosum, mientras que los menores fueron para los frutos de R. tholiformis y G. naturalistae. El porcentaje de proteína (10.74 - 14.71 b.s.), lípidos (3.97 - 7.19 b.s.) y fibra dietaria (24.15 - 36.78 b.s.) fue similar al de otras verduras como brócoli, pepino, chayote y nopal.
Conclusiones: Las especies de Apocynaceae evaluadas no presentaron indicios de toxicidad y su consumo puede contribuir significativamente con fibra dietaria y fitoquímicos antioxidantes, por lo que se respalda su uso tradicional.

Descargas

Los datos de descargas todavía no están disponibles.

Biografía del autor/a

Juan Fernando Pío-León,

Instituto Politécnico Nacional, Centro Interdisciplinario de Investigación para el Desarrollo Integral Regional, Unidad Durango

Botánica y etnobotánica

Citas

Al-Snafi, E. A. 2015. Chemical constituents and pharmacological effects of Asclepias curassavica – A review. Asian Journal of Pharmaceutical Research 5(2): 83-87.

Alonso-Castro, A. J., V. Arana-Argáez, E. Yáñez-Barrientos, J. C. Torres-Romero, R. J. Chable-Cetz, K. Worbel, A. J. Euan-Canto, K. Wrobel, A. González-Ibarra, C. R. Solorio-Alvarado y M. C. Juárez-Vázquez. 2021. Pharmacological activities of Asclepias curassavica L. (Apocynaceae) aerial parts. Journal of Ethnopharmacology 281: 114554. DOI: https://doi.org/10.1016/j.jep.2021.114554 DOI: https://doi.org/10.1016/j.jep.2021.114554

Alvarado-Cárdenas, L. O. 2021. Talayotea (Apocynaceae: Asclepiadoideae, Gonolobineae), un género nuevo y endémico de México. Phytoneuron 62: 1-18.

Alvarado-Cárdenas, L. O., L. Lozada-Pérez, C. S. Islas-Hernández, E. B. Cortez, K. G. Maya-Mandujano y M. G. Chávez-Hernández. 2020. Apocináceas de ayer y hoy. Conocimiento histórico y reevaluación de la diversidad y distribución de Apocynaceae en México. Botanical Sciences 98(2): 393-416. DOI: https://doi.org/10.17129/botsci.2525 DOI: https://doi.org/10.17129/botsci.2525

AOAC. 1999. Official Methods of Analysis. Association of Official Analytical Chemists (AOAC). 16th Edition, 5th Revision. Washington DC., USA. 1200 pp.

Astello-García, M. G., I. Cervantes, V. Nair, M. S. Santos-Díaz, A. Reyes-Agüero, F. Guéraud, A. Negre-Salvayre, M. Rossignol, L. Cisneros-Zevallos y A. P. Barba-de La Rosa. 2015. Chemical composition and phenolic compounds profile of cladodes from Opuntia spp. cultivars with different domestication gradient. Journal of Food Composition and Analysis 43: 119-130. DOI: https://doi.org/10.1016/j.jfca.2015.04.016 DOI: https://doi.org/10.1016/j.jfca.2015.04.016

Ávila Uribe, M., M. L. Suárez Soto y F. J. Díaz Perea. 1994. Campesinos Tének en una comunidad campesina rural de la Huasteca Potosina complementan su dieta básica con plantas locales. Botanical Sciences 54: 3-15. DOI: https://doi.org/10.17129/botsci.1425 DOI: https://doi.org/10.17129/botsci.1425

Bayón, N. D. y A. M. Arambarri. 1999. Anatomía y etnobotánica de las especies medicinales de la Provincia Pampeana: Asclepiadaceae. Acta Farmacéutica Bonaerense 18(1): 23-31.

Beltrán-Villanueva, C. E., F. Díaz-Castillo y H. Gómez-Estrada. 2013. Preliminary phytochemical screening of promising plant species of the Colombian Atlantic coast. Revista Cubana de Plantas Medicinales 18(4): 619-631.

Bhadane, B. S., M. P. Patil, V. L. Maheshwari y R. H. Patil. 2018. Ethnopharmacology, phytochemistry, and biotechnological advances of family Apocynaceae: A review. Phytotherapy Research 32(7): 1181-1210. DOI: https://doi.org/10.1002/ptr.6066 DOI: https://doi.org/10.1002/ptr.6066

Brand-Williams, W., M. E. Cuvelier y C. Berset. 1995. Use of a free radical method to evaluate antioxidant activity. LWT - Food Science and Technology 28(1): 25-30. DOI: https://doi.org/10.1016/S0023-6438(95)80008-5 DOI: https://doi.org/10.1016/S0023-6438(95)80008-5

Christenhusz, M. J. M., M. F. Fay y M. W. Chase. 2017. Plants of the word: an illustrated encyclopedia of vascular plants. Kew Publishing & Chicago University Press. Kew, UK-Chicago, USA. 792 pp. DOI: https://doi.org/10.7208/chicago/9780226536705.001.0001

Díaz-de-Cerio, E., V. Verardo, A. Fernández-Gutiérrez y A. M. Gómez-Caravaca. 2019. New insight into phenolic composition of chayote (Sechium edule (Jacq.) Sw.). Food Chemistry 295: 514-519. DOI: https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2019.05.146 DOI: https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2019.05.146

DOF. 2001. Norma Oficial Mexicana NOM-062-ZOO-1999, Especificaciones técnicas para la producción, cuidado y uso de los animales de laboratorio. https://www.dof.gob.mx/nota_detalle.php?codigo=762506&fecha=22/08/2001#gsc.tab=0 (consultado junio de 2021).

Fernández-Brewer, A. M., V. Juárez-Jaimes y L. Cortés-Zárraga. 2008. Uses of the genus Asclepias L. (Apocynaceae, Asclepiadoideae), information from the National Herbarium of Mexico, MEXU. Polibotánica 25: 155-171.

González-Elizondo, M. G., H. González-Ávila, N. L. Piedra-Leandro, A. Castro-Castro, M. S. González-Elizondo y U. Luna-Vargas. 2024. Quelites del Gran Nayar, un acercamiento. Etnobiología 22(3): 24-45.

Harborne, J. B. 1984. Phytochemical methods. A guide to modern techniques of plant analysis. Springer Dordrecht. Dordrecht, Netherlands. 288 pp.

Hodgson, W. C. 2001. Food plants of the Sonoran Desert. University of Arizona Press. Oakland, USA. 313 pp.

Huang, D., B. Ou, M. Hampsch-Woodill, J. A. Flanagan y R. L. Prior. 2002. High-throughput assay of oxygen radical absorbance capacity (ORAC) using a multichannel liquid handling system coupled with a microplate fluorescence reader in 96-well format. Journal of Agricultural and Food Chemistry 50(16): 4437-4444. DOI: https://doi.org/10.1021/jf0201529 DOI: https://doi.org/10.1021/jf0201529

IBM. 2021. IBM SPSS Statistics v. 28.0.1.0. International Business Machines Corporation (IBM). Armonk, United States. https://www.ibm.com/mx-es (consultado marzo de 2022).

iNaturalistMX. 2024a. Funastrum heterophyllum, observación 115820609. Transformación, Arte y Educación (TAE). Mérida, México. https://mexico.inaturalist.org/observations/115820609 (consultado mayo de 2021).

iNaturalistMX. 2024b. Funastrum clausum, observación 115820620. Transformación, Arte y Educación (TAE). Mérida, México. https://mexico.inaturalist.org/observations/115820620 (consultado mayo de 2021).

iNaturalistMX. 2024c. Funastrum pannosum, observación 57867302. Transformación, Arte y Educación (TAE). Mérida, México. https://mexico.inaturalist.org/observations/57867302 (consultado mayo de 2021).

iNaturalistMX. 2024d. Ruehssia tholiformis, observación 115820617. Transformación, Arte y Educación (TAE). Mérida, México. https://mexico.inaturalist.org/observations/115820617 (consultado mayo de 2022).

iNaturalistMX. 2024e. Asclepias curassavica, observación 294398591. Transformación, Arte y Educación (TAE). Mérida, México. https://mexico.inaturalist.org/observations/294398591 (consultado julio de 2025).

iNaturalistMX. 2024f. Asclepias curassavica, observación 291292300. Transformación, Arte y Educación (TAE). Mérida, México. https://mexico.inaturalist.org/observations/291292300 (consultado julio de 2025).

Kaur, C. y H. C. Kapoor. 2002. Anti-oxidant activity and total phenolic content of some Asian vegetables. International Journal of Food Science and Technology 37(2): 153-161. DOI: https://doi.org/10.1046/j.1365-2621.2002.00552.x DOI: https://doi.org/10.1046/j.1365-2621.2002.00552.x

Ledesma-Solano, J. A., A. Chávez-Villasana, F. Pérez-Gil-Romo, E. Mendoza-Martínez y C. Calvo-Carrillo. 2010. Composición de alimentos Miriam Muñoz de Chávez. Valor nutritivo de los alimentos de mayor consumo. MacGraw-Hill Interamericana. México, D.F., México. 365 pp.

Marcos-Gómez, R., A. M. Vera-Guzmán, M. L. Pérez-Ochoa, L. Martínez-Martínez, S. Hernández-Delgado, D. Martínez-Sánchez y J. L. Chávez-Servia. 2024. Phenolic compounds and antioxidant activity in edible flower species from Oaxaca. Applied Sciences 14(8): 3136. DOI: https://doi.org/10.3390/app14083136 DOI: https://doi.org/10.3390/app14083136

Meyer, B. N., N. R. Ferigni, J. E. Putnam, L. B. Jabcobsen, D. E. Nichols y J. L. McLaughlin. 1982. Brine shrimp: a conventient general bioassay for active plant constituent. Planta Medica 45(5): 31-45. DOI: https://doi.org/10.1055/s-2007-971236

Minitab. 2019. Minitab Statistical Software, v. 19. Minitab, LLC. Pennsylvania, United States. https://www.minitab.com/es-mx/

Microsoft Corporation. 2019. Excel. Microsoft Office Professional Plus 2019. Microsoft Corporation. Redmon, United States. https://www.microsoft.com/es-mx/ (consultado febrero de 2024).

Navarro, G., I. Ávila, P. Mollinedo, L. Vila y G. Ruiz. 2010. Valoración de la toxicidad aguda in vivo del ácido úsnico. Revista Boliviana de Química 27(2): 89-93.

OECD. 2002. Test no. 423: Acute Oral toxicity - Acute Toxic Class Method. OECD Guidelines for the Testing of Chemicals, Section 4. OECD Publishing. Paris, Francia. DOI: https://doi.org/10.1787/9789264071001-en DOI: https://doi.org/10.1787/9789264071001-en

Paredes-López, O., M. L. Cervantes-Ceja, M. Vigna-Pérez y T. Hernández-Pérez. 2010. Berries: Improving human health and healthy aging, and promoting quality life-A Review. Plant Foods for Human Nutrition 65: 299-308. DOI: https://doi.org/10.1007/s11130-010-0177-1 DOI: https://doi.org/10.1007/s11130-010-0177-1

Pękal, A. y K. Pyrzynska. 2014. Evaluation of aluminium complexation reaction for flavonoid content assay. Food Analytical Methods 7: 1776-1782. DOI: https://doi.org/10.1007/s12161-014-9814-x DOI: https://doi.org/10.1007/s12161-014-9814-x

Peña-Galván, M. L., M. E. Sosa-Morales y A. Cerón-García. 2017. Determinación de fenoles, flavonoides y parámetros fisicoquímicos en chayote (Sechium edule) procesado térmicamente. Jóvenes en la Ciencia 3(2): 101-106.

Pérez, M., I. Dominguez-López y R. M. Lamuela-Raventós. 2023. The chemistry behind the Folin–Ciocalteu method for the estimation of (Poly) phenol content in food: Total phenolic intake in a mediterranean dietary pattern. Journal of Agricultural and Food Chemistry 71(46): 17543-17553. DOI: https://doi.org/10.1021/acs.jafc.3c04022 DOI: https://doi.org/10.1021/acs.jafc.3c04022

Pinedo-Espinoza, J. M., J. Gutiérrez-Tlahque, Y. O. Santiago-Saenz, C. L. Aguirre-Mancilla, M. Reyes-Fuentes y C. U. López-Palestina. 2020. Nutritional composition, bioactive compounds and antioxidant activity of wild edible flowers consumed in semiarid regions of Mexico. Plant Foods for Human Nutrition 75: 413-419. DOI: https://doi.org/10.1007/s11130-020-00822-2 DOI: https://doi.org/10.1007/s11130-020-00822-2

Pío-León, J. F., F. Delgado-Vargas, J. L. León-de la Luz y A. Ortega-Rubio. 2017. Prioritizing Wild Edible Plants for potential new crops based on Deciduous Forest Traditional knowledge by a Rancher community. Botanical Sciences 95(1): 47-59. DOI: https://doi.org/10.17129/botsci.772 DOI: https://doi.org/10.17129/botsci.772

Price, M. L., V. S. Scoyoc y L. G. Butler. 1978. A critical evaluation of the vanillin reaction as an assay for tannin in sorghum grain. Journal of Agricultural and Food Chemistry 26(5): 1214-1218. DOI: https://doi.org/10.1021/jf60219a031 DOI: https://doi.org/10.1021/jf60219a031

Prior, R. L., X. Wu y L. Schaich. 2005. Standardized methods for the determination of antioxidant capacity and phenolics in foods and dietary supplements. Journal of Agricultural and Food Chemistry 53(10): 4290-4302. DOI: https://doi.org/10.1021/jf0502698 DOI: https://doi.org/10.1021/jf0502698

Quettier-Deleu, C., B. Gressier, J. Vasseur, T. Dine, C. Brunet, M. Luyckx, M. Cazin, J-C. Cazin, F. Bailleaul y F. Trotin. 2000. Phenolic compounds and antioxidant activities of buckwheat (Fagopyrum esculentum Moench) hulls and flour. Journal of Ethnopharmacology 72(1-2): 35-42. DOI: https://doi.org/10.1016/S0378-8741(00)00196-3 DOI: https://doi.org/10.1016/S0378-8741(00)00196-3

Re, R., N. Pellegrini, A. Proteggente, A. Pannala, M. Yang y C. Rice-Evans. 1999. Antioxidant activity applying an improved ABTS radical cation decolorization assay. Free Radical Biology and Medicine 26(9-10): 1231-1237. DOI: https://doi.org/10.1016/s0891-5849(98)00315-3 DOI: https://doi.org/10.1016/S0891-5849(98)00315-3

Rodrigues Maciel, L. T., F. B. Sant’Anna-Pereira, G. Akisue, F. A. da Silva-Coêlho y M. D. Gonçalves-Coêlho. 2019. Anticoccidial and toxicological activity of Asclepias curassavica L. and Euphorbia pulcherrima Willd. ex Klotzsch decocts against Eimeria bovis oocysts. Pubvet 14(3): 1-8. DOI: https://doi.org/10.31533/pubvet.v13n4a308.1-8

Sandoval-Ortega, M. H., E. E. de Loera-Ávila, V. M. Martínez-Calderón y S. G. Zumaya-Mendoza. 2023. Plantas silvestres comestibles del estado de Aguascalientes, México, sus formas de consumo y comercialización. Polibotánica 55(28): 213-230. DOI: https://doi.org/10.18387/polibotanica.55.14 DOI: https://doi.org/10.18387/polibotanica.55.14

Schmidt, R. 1985. Optical motility test for the detection of trichothecenes using brine shrimps. Mycotoxin Research 1(1): 25-29. DOI: https://doi.org/10.1007/BF03191951 DOI: https://doi.org/10.1007/BF03191951

Singleton, V. L y J. A. Rossi. 1965. Colorimetry of total phenolics with phosphomolybdic-phosphotungstic acid reagents. American Journal of Enology and Viticulture 16(3): 144-158. DOI: https://doi.org/10.5344/ajev.1965.16.3.144 DOI: https://doi.org/10.5344/ajev.1965.16.3.144

Statgraphics. 2019. Statgraphics Centurion v. 16.1. Statgraphics Technologies, Inc. The Plains, USA. https://www.statgraphics.com/ (consultado marzo del 2022).

Stevens, W. D. 2005. Fourteen new species of Gonolobus (Apocynaceae, Asclepiadoideae) from Mexico and Central America. Novon 15(1): 222-244.

USDA. 2020. Dietary Guidelines for Americans, 2020-2025. U.S. Department of Agriculture and U.S. Department of Health and Human Services. https://www.dietaryguidelines.gov (consultado febrero de 2025).

Yetman, D. y T. R. Van Devender. 2002. Mayo ethnobotany: land, history, and traditional knowledge in northwest Mexico. University of California Press. London, England. 360 pp. DOI: https://doi.org/10.1525/california/9780520227217.001.0001

Descargas

Publicado

2025-08-21

Cómo citar

Rodríguez Acuña, A. I., López Angulo, G., Delgado Vargas, F., Escobar Zúñiga, Y., & Pío-León, J. F. (2025). Caracterización fitoquímica, antioxidante, nutricional y toxicidad en cinco especies comestibles de Asclepiadoideae (Apocynaceae) del noroeste de México. Acta Botanica Mexicana, (132). https://doi.org/10.21829/abm132.2025.2462
Metrics
Vistas/Descargas
  • Resumen
    595
  • PDF
    182
  • EPUB
    4
  • XML
    15

Número

Sección

Fitoquímica

Métrica

Artículos más leídos del mismo autor/a