Análisis meiótico de una cruza entre girasol cultivado (Helianthus annuus L. var. macrocarpus) y girasol silvestre (Helianthus annuus L. ssp. texanus Heiser)
DOI:
https://doi.org/10.21829/abm80.2007.1043Palabras clave:
análisis meiótico, configuraciones meióticas, Helianthus annuus, hibridaciónResumen
En el presente trabajo se compararon los patrones de apareamiento cromosómico meiótico del girasol cultivado (Helianthus annuus L. var. macrocarpus, línea pública HA 89), girasol silvestre (Helianthus annuus L. ssp. texanus Heiser, procedente de Saltillo, Coahuila) y del híbrido F1. Para ello se analizaron meiocitos en diacinesis y metafase I, basándose en la frecuencia de las configuraciones meióticas. Se evaluó la viabilidad de polen por medio de un método de tinción. El apareamiento cromosómico fue normal en los tres genotipos, con ausencia de univalentes y multivalentes, y sólo se observaron bivalentes en cadena y anillo, por lo que se concluye que los genomas parentales son altamente compatibles en la meiosis. El híbrido presentó un índice de apareamiento cromosómico de 0.82, próximo al valor medio parental (0.80) y la diferencia del híbrido con cada uno de los taxa parentales (taxon cultivado 0.87 y taxon silvestre 0.75) fue altamente significativa, además de variar dentro de las poblaciones estudiadas. Esto indica que el carácter número de quiasmas está bajo control multigénico y se ve afectado por el ambiente. Así pues, una población formada con los progenitores podría ser utilizada para analizar los loci de atributos cuantitativos (QTLs) para apareamiento cromosómico meiótico. El híbrido tuvo un porcentaje de viabilidad de polen (92.58) comparable con el de las plantas parentales (la silvestre 95.57 y la cultivada 95.33). La viabilidad de polen en la F1 fue alta, mostró fertilidad, y los genomas de los progenitores fueron altamente compatibles en la meiosis, corroborando que no hay barreras para la reproducción sexual. Esto indica que no hay dificultad en el flujo genético y que se pueden transferir caracteres deseables de H. annuus silvestre al cultivado.
Descargas
Citas
Atlagic, J., B. Dozet y D. Skoric. 1993. Meiosis and pollen viability in Helianthus tuberosus L. and its hybrids with cultivated sunflower. Pl. Breed. 111: 318-324. DOI: https://doi.org/10.1111/j.1439-0523.1993.tb00648.x
Atlagic, J., B. Dozet y D. Skoric. 1995. Meiosis and pollen grain viability in Helianthusmollis, H. salicifolius, H. maximiliani and their F1 hybrids with cultivated sunflower.Euphytica 81: 259-263. DOI: https://doi.org/10.1007/BF00025615
Atlagic, J. y D. Skoric. 1999. Cytogenetic study of Helianthus laevigatus and its F, and BC, F, hybrids with cultivated sunflower, Helianthus annuus. Pl. Breed. 118: 555-559. DOI: https://doi.org/10.1046/j.1439-0523.1999.00423.x
Edwards, A. W. F. 1992. Likelihood. John Hopkins University Press. Baltimore. 275 pp.
Jackson, R. C. 1982. Polyploidy and diploidy: new perspectives on chromosome pairing and its evolutionary implications. Amer. J. Bot. 69: 1512-1523. DOI: https://doi.org/10.1002/j.1537-2197.1982.tb13400.x
Jackson, R. C. 1988. A quantitative cytogenetic analysis of an intersectional hybrid in Helianthus (Compositae). Amer. J. Bot. 75: 609-614. DOI: https://doi.org/10.1002/j.1537-2197.1988.tb13484.x
Jan, C. C. y J. M. Chandler. 1989. Sunflower interspecific hybrids and amphiploids of Helianthus annuus x H. bolanderi. Crop Sci. 29: 643-646. DOI: https://doi.org/10.2135/cropsci1989.0011183X002900030019x
Jauhar, P. P. y L. R. Joppa. 1996. Chromosome pairing as a tool in genome analysis: merits and limitations. In: Jauhar, P. P. (ed.). Methods of genome analysis in plants. CRC Press. Nueva York. pp. 9-37.
Larsen, R. J. y M. L. Marx. 1986. An introduction to mathematical statistics and its applications. 2a ed. Prentice-Hall. Englewood Cliffs. 630 pp.
Littell, R. C., R. J. Freund y P. C. Spector. 1991. SAS system for linear models. SAS Institute Inc., Cary. 329 pp.
Lynch, M. y B. Walsh. 1998. Genetics and analysis of quantitative traits. Sinauer Associates, Inc. Sunderland. 980 pp.
Morgan, W. G. y H. Thomas. 1991. A study of chromosome association and chiasma formation in the amphidiploid between Lolium multiflorum and Festuca drymeja. Heredity 67: 241-245. DOI: https://doi.org/10.1038/hdy.1991.85
Morgan, W. G., H. Thomas, M. Evans y M. Borrill. 1986. Cytogenetic studies of interspecific hybrids between diploid species of Festuca. Can. J. Genet. Cytol. 28: 921-925. DOI: https://doi.org/10.1139/g86-128
Quillet, M. C., N. Madjidian, V. Griveau, H. Serieys, M. Tersac, M. Lorieux y A. Berville.1995. Mapping genetic factors controlling pollen viability in an interspecific cross in Helianthus sect. Helianthus. Theor. Appl. Genet. 91: 1195-1202. DOI: https://doi.org/10.1007/BF00220929
Reyes-Valdés, M. H. y D. M. Stelly. 1995. A maximum likelihood algorithm for genome mapping of cytogenetic loci from meiotic configuration data. Proc. Natl. Acad. Sci.U.S.A. 92: 9824-9828. DOI: https://doi.org/10.1073/pnas.92.21.9824
Reyes-Valdés, M. H., Y. Ji, C. F. Crane, J. F. Taylor, M. N. Islam-Faridi, H. J. Price y D. M. Stelly. 1996. ISH-facilitated analysis of meiotic bivalent pairing. Genome 39: 784-792. DOI: https://doi.org/10.1139/g96-098
Rieseberg, L. H., A. M. Desrochers y S. J. Youn. 1995. Interspecific pollen competition as a reproductive barrier between sympatric species of Helianthus (Asteraceae). Amer. J. Bot. 82: 515-519. DOI: https://doi.org/10.1002/j.1537-2197.1995.tb15672.x
Rogers, C. E., T. E. Thompson y G. J. Seiler. 1982. Sunflower species of the United States. Natl. Sunflower Assoc. Bismarck. 75 pp.
Seiler, G. J. 1988. The genus Helianthus as a source of genetic variability for cultivated sunflower. In: Proc.12th Int. Sunflower Conf., Novi Sad, Yugoslavia. 25-29 July 1988.
Int. Sunflower Assoc. Paris, France. Vol. 1 pp. 17-58.
Seiler, G. J. 1992. Utilization of wild sunflower species for the improvement of cultivated sunflower. Field Crops Res. 30: 195-230. DOI: https://doi.org/10.1016/0378-4290(92)90002-Q
Thomas, H. M. y W. G. Morgan. 1990. Analysis of synaptonemal complexes and chromosome pairing at metaphase I in the diploid intergeneric hybrid Lolium multiflorum x Festuca drymeja. Genome 33: 465-471. DOI: https://doi.org/10.1139/g90-069
Thompson, T. E., D. C. Zimmerman y C. E. Rogers. 1981. Wild Helianthus as a genetic resource. Field Crops Res. 4: 333-343. DOI: https://doi.org/10.1016/0378-4290(81)90083-6
Vanozzi, G. P. 1994. Study of embryogenesis in interspecific hybrids. In: Seiler, G. J. (ed.). FAO working group: evaluation of wild Helianthus species. Progress report 1991-1993. pp. 117-118.
Whelan, E. D. P. 1979. Interspecific hybrids between Helianthus petiolaris Nutt. and H. annuus L.: effect of backcrossing on meiosis. Euphytica 28: 297-308. DOI: https://doi.org/10.1007/BF00056586
Whelan, E. D. P. 1982. Trisomic progeny from interspecific hybrids between Helianthus maximiliani and H. annuus. Can. J. Genet. Cytol. 24: 375-384. DOI: https://doi.org/10.1139/g82-040
Publicado
Cómo citar
-
Resumen1040
-
PDF225
Número
Sección
Licencia
Derechos de autor 2016 Acta Botanica Mexicana

Esta obra está bajo una licencia internacional Creative Commons Atribución-NoComercial 4.0.
Los autores/as que publiquen en esta revista aceptan las siguientes condiciones:
De acuerdo con la legislación de derechos de autor, Acta Botanica Mexicana reconoce y respeta el derecho moral de los autores, así como la titularidad del derecho patrimonial, el cual será cedido a la revista para su difusión en acceso abierto. Acta Botanica Mexicana no realiza cargos a los autores por enviar y procesar artículos para su publicación.
Todos los textos publicados por Acta Botanica Mexicana –sin excepción– se distribuyen amparados bajo la licencia Creative Commons 4.0 Atribución-No Comercial (CC BY-NC 4.0 Internacional), que permite a terceros utilizar lo publicado siempre que mencionen la autoría del trabajo y a la primera publicación en esta revista.
Los autores/as pueden realizar otros acuerdos contractuales independientes y adicionales para la distribución no exclusiva de la versión del artículo publicado en Acta Botanica Mexicana (por ejemplo incluirlo en un repositorio institucional o publicarlo en un libro) siempre que indiquen claramente que el trabajo se publicó por primera vez en Acta Botanica Mexicana.
Para todo lo anterior, el corrector de originales le solicitará junto con la revisión de galeras, que expida su Carta-Cesión de la Propiedad de los Derechos de la primera publicación debidamente requisitado y firmado por el autor(es). Esta carta se debe enviar por correo electrónico en archivo pdf al correo: acta.botanica@inecol.mx (Carta-Cesión de Propiedad de Derechos de Autor).