Núm. 126 (2019)
Artículo de investigación

Anatomía foliar de Malpighia mexicana (Malpighiaceae)

Lorena Yeraldi Bárcenas-López
Universidad Autónoma del Estado de México, Facultad de Ciencias Agrícolas, Posgrado en Ciencias Agropecuarias y Recursos Naturales (PCARN), Campus Universitario El Cerrillo
Susana Adriana Montaño-Arias
Colegio de Posgraduados, Instituto de Recursos Naturales, Programa de Botánica
José Antonio López-Sandoval
Universidad Autónoma del Estado de México, Facultad de Ciencias Agrícolas, Campus Universitario El Cerrillo
Andrés González Huerta
Universidad Autónoma del Estado de México, Facultad de Ciencias Agrícolas, Campus Universitario El Cerrillo
Martín Rubí-Arriaga
Universidad Autónoma del Estado de México, Facultad de Ciencias Agrícolas, Campus Universitario El Cerrillo
Georgina Vargas Simón
Universidad Autónoma del Estado de México
Biografía

Publicado 2018-12-05

Palabras clave

  • adaptation,
  • anatomical characters,
  • ecoanatomy,
  • foliar structure,
  • taxonomy
  • adaptación,
  • caracteres anatómicos,
  • ecoanatomía,
  • estructura foliar,
  • taxonomía

Resumen

Antecedentes y Objetivos: Malpighia mexicana es un árbol nativo de México y ampliamente distribuido en el país. Se cultiva en huertos o traspatios de zonas rurales, es fuente de recursos económicos, maderables, ornamentales y medicinales. Los estudios sobre la anatomía foliar del género Malpighia son escasos; caracteres como la forma, longitud, ancho y pubescencia de la hoja se usan para clasificar sus especies. Debido a lo anterior, los objetivos de este estudio fueron describir las características anatómicas de la hoja de M. mexicana y determinar los caracteres estructurales que están influenciados por el ambiente, como una forma de contribuir al conocimiento taxonómico y ecoanatómico del género Malpighia en México.

Métodos: Se seleccionaron tres individuos con altura y cobertura similar en tres sitios; se obtuvo una muestra compuesta de 20 hojas; las hojas se fijaron en FAA, se lavaron con agua corriente y se procesaron mediante técnicas de anatomía convencional, terminando con una inclusión e infiltración en parafina. Se realizaron cortes paradermales y transversales (15-20 µm), se tomaron fotografías y se registraron mediciones con el analizador de imágenes Leica LV 40.

Resultados clave: Las hojas de M. mexicana en corte paradermal presentan células poligonales y rectangulares, en algunos casos ovado-rectangulares, paredes anticlinales lineales y gruesas, son hipoestomáticas con complejos estomáticos paracíticos y presentan apéndices epidérmicos con tricomas unicelulares simples y ramificados. Transversalmente, las hojas constan de una epidermis simple uniestratificada y mesófilo bifacial. Se observó el desarrollo de estrategias de adaptación tanto en ambientes mésicos como en ambientes xéricos.

Conclusiones: Los caracteres anatómicos que distinguen a M. mexicana de otras especies de su género son la disposición y tipo de tricomas y estomas. La anatomía foliar presentó rasgos correlacionados tanto con ambientes mésicos (hoja dorsiventral, espacios intercelulares en el mesófilo, ausencia de esclerénquima) como con ambientes xéricos (epidermis de células grandes, mayor concentración de estomas en la superficie abaxial).

Citas

  1. Agrios, G. N. 2010. Fitopatología: Plant pathology. Ed. Limusa. México, D.F., México. 838 pp.
  2. Anderson, C. 2001a. The identity of two water-dispersed species of Heteropterys (Malpighiaceae): H. leona and H. platyptera. Contributions from the University of Michigan Herbarium 23: 35-47.
  3. Anderson, W. R. 1979. Floral conservatism in neotropical Malpighiaceae. Biotropica 11(3): 219-223. DOI: https://doi.org/10.2307/2388042
  4. Anderson, W. R. 2001b. Malpighiaceae. Flora of the Venezuelan Guayana 6: 82-185.
  5. Anderson, W. R. 2013. Origins of Mexican Malpighiaceae. Acta Botanica Mexicana 104: 107-156. DOI: https://doi.org/10.21829/abm104.2013.60
  6. Arambarri, A. M., M. C. Novoa, N. D. Bayón, M. P. Hernández, M. N. Colares y C. Monti. 2011. Ecoanatomía foliar de árboles y arbustos de los distritos chaqueños occidental y serrano (Argentina). Boletín de la Sociedad Argentina de Botánica 46(3-4): 251-270.
  7. Araque, O., R. E. Jaimez, C. Azócar, W. Espinoza y W. Tezara. 2009. Relaciones entre anatomía foliar, intercambio de gases y crecimiento en juveniles de cuatro especies forestales. Interciencia 34(10): 725-729.
  8. Araújo-Silva, J., A. A. Azevedo, L. C. Silva y R. M. Meira. 2010. Leaf anatomy as an additional taxonomy tool for 16 species of Malpighiaceae found in the Cerrado area (Brazil). Plant Systematics and Evolution 286(1-2): 117-131. DOI: https://doi.org/10.1007/s00606-010-0268-3
  9. Attala, N. C. 1997. Fitografía e morfoanatomia de Banisteriopsis anisandra e B. gardneriana (Malpighiaceae): Estudo comparativo. Instituto de Ciencias Biológicas, Universidade de Brasília. Brasilia, Brasil. Pp. 100-135.
  10. Briceño, B., A. Azócar, M. Fariñas y F. Rada. 2000. Características anatómicas de dos especies de Lupinus L. de los Andes venezolanos. Pittieria 1: 21-35.
  11. Cañizares, A., M. E. Sanabria, D. A. Rodríguez y Y. Perozo. 2003. Características de los estomas, índice y densidad estomática de las hojas de lima Tahití (Citrus latifolia Tanaka) injertada sobre ocho patrones cítricos. Revista Científica UDO Agrícola 3(1): 59-64.
  12. Castañeda-Vildózola, A., O. Franco-Mora, J. C. R. Alemán, C. Ruiz-Montiel, J. Valdez-Carrasco y A. Equihua-Martínez. 2014. New distribution records of the small avocado seed weevil, Conotrachelus perseae Barber (Coleóptera: Curculionidae), in Mexico and notes on its biology. The Coleopterists Bulletin 69(2): 267-271. DOI: https://doi.org/10.1649/0010-065X-69.2.267
  13. Castro, M. M., H. F. Leitão-Filho y W. R. Monteiro. 1997. Utilização de estruturas secretoras na identificação dos gêneros de Asteraceae de uma vegetação de cerrado. Revista Brasileira de Botânica 20: 163-174.
  14. Chapolagh-Paridari, I., S. Gholamali-Jalali, A. Sonboli, M. Zarafshar y P. Bruschi. 2013. Leaf macro and micro-morphological altitudinal variability of Carpinus betulus in the Hyrcanian forest (Iran). Journal of Forestry Research 24(2): 301-307. DOI: https://doi.org/10.1007/s11676-013-0353-x
  15. CONAGUA. 2017. Datos contenidos en la base de datos climatológica. Comisión Nacional del Agua. www.smn.cna.gob.mx/climatologia/Diarios/20191.txt (consultado agosto de 2017).
  16. Davis, C. C y W. R. Anderson. 2010. A complete generic phylogeny of Malpighiaceae inferred from nucleotide sequence data and morphology. American Journal of Botany 97(12): 2031-2048. DOI: https://doi.org/10.3732/ajb.1000146
  17. Eggli, U. 1984. Stomatal types of Cactaceae. Plant Systematics and Evolution 146(3-4): 197-214. DOI: https://doi.org/10.1007/BF00989546
  18. Ely, F., F. Torres y J. Gaviria. 2005. Morfología y anatomía foliar de Monochaetum meridense (Melastomataceae). Acta Botanica Venezuelica 28(2): 197-212.
  19. Engelbrecht, B. M. J., V. Velez y M. Tyree. 2000. Hydraulic conductance of two co-occuring Neotropical understory shrubs with different habitat preferences. Annals of Forest Science 57(3): 201-208. DOI: https://doi.org/10.1051/forest:2000111
  20. Espinoza-Velázquez, J., J. Valdés-Reyna y J. Alcalá-Rodríguez. 2012. Morfología y anatomía de radículas múltiples en plántulas de maíz derivadas de cariopsis con poliembrionía. Polibotánica 33: 207-221.
  21. Fank-de-Carvalho, S., M. Salete Marchioretto y S. Nair Báo. 2010. Anatomía foliar, morfología e aspectos ecológicos das especies da familia Amaranthaceae da Reserva Particular do Patrimonio Natural Cara Preta, em Alto Paraíso, Brasil. Biota Neotropica 10(4): 77-86. DOI: https://doi.org/10.1590/s1676-06032010000400011
  22. Finley, D. S. 1999. Patterns of calcium oxalate crystals in young tropical leaves: a possible role as an anti-herbivory defense. Revista de Biología Tropical 47: 27-31.
  23. García, E. 1988. Modificaciones al Sistema de Clasificación Climática de Köppen. Ed. Ofset Larios. México, D.F., México. 217 pp.
  24. Gates, B. 1982. Banisteriopsis, Diplopterys (Malpighiaceae). Flora Neotropica Monograph 30: 1-237.
  25. Granada-Chacón, W. A. y C. E. Benítez de Rojas. 2004. Anatomía foliar de cuatro especies de Solanum L. sección. Acanthopora Dunal de Venezuela. Acta Científica Venezolana 55: 13-26.
  26. Herrera-Cárdenas, R., T. Terrazas y S. Loza-Cornejo. 2000. Anatomía comparada del tallo y de la raíz de las especies del género Neoevansia Marshall (Cactaceae). Boletín de la Sociedad Botánica de México 67: 5-16.
  27. INFOSTAT. 2017. Grupo InfoStat, versión 2017. Facultad de Ciencias Agropecuarias. Universidad Nacional de Córdoba. Córdoba, Argentina.
  28. Jiménez-Noriega, M. S., T. Terrazas y L. López-Mata. 2015. Variación morfo-anatómica de Ribes ciliatum a lo largo de un gradiente altitudinal en el norte de la Sierra Nevada, México. Botanical Sciences 93(1): 23-32. DOI: https://doi.org/10.17129/botsci.131
  29. Johansen, D. A. 1940. Plant Microtechnique. McGraw Hill. New York, USA. 523 pp.
  30. Laskowski, L. 2000. Características anatómicas de la hoja y el tallo del semeruco (Malpighia emarginata DC.) cultivado en dos localidades del Estado Lara. Bioagro 12(2): 33-40.
  31. Laskoswki, L. y D. Bautista. 1999. Secuencia de aparición y características anatómicas de las raíces adventicias del semeruco bajo dos tratamientos de AIB. Bioagro 11(3): 88-96.
  32. Leegod, R. C. 1993. Carbon dioxide concentrating mechanisms. In: Lea, P. J., R. C. Leegod, J. Wiley y S. Chichester (eds.). Plant Biochemistry and Molecular Biology. Chichester, UK. Pp. 47-72.
  33. Lindorf, H. 1994. Eco-anatomical wood features of species from a very dry tropical forest. IAWA Journal 15(4): 361-376.
  34. Liscovsky, I. J y M. T. Cosa. 2005. Comparative anatomy of leaf and stem in species of Cestreae. Gayana Botanica 62(1): 33-43. DOI: https://doi.org/10.4067/S0717-66432005000100006
  35. Maldonado-Peralta, M. A., G. García de los Santos, J. R. García Nava, T. Corona Torres, V. M. Cetina Alcalá y C. Ramírez Herrera. 2016. Calidad morfológica de frutos y endocarpios del nanche rojo (Malpighia mexicana), Malpighiaceae. Acta Botanica Mexicana 117: 37-46. DOI: https://doi.org/10.21829/abm117.2016.1166
  36. Martín-Montiel, D. C., S. M. Pérez de Bianchi1, A. Etcheverry, C. Camardelli, M. Alemán y T. Figueroa. 2012. Hábito de crecimiento y anatomía de la raíz en Macroptilium erythroloma y Macroptilium bracteatum (Fabaceae). Phyton 81: 215-220.
  37. Metcalfe C. R. y L. Chalk. 1979. Anatomy of the Dicotyledons: Systematic Anatomy of Leaf and Stem. Vol I. 2a ed. Clarendon Press, Oxford. London, UK. 1459 pp.
  38. Milan, P., A. H. Hayashi y B. Appezzato-da-Glória. 2006. Comparative leaf morphology and anatomy of three Asteraceae species. Brazilian Archives of Biology and Technology 49(1): 135-144. DOI: https://doi.org/10.1590/S1516-89132006000100016
  39. Molina-Montenegro, M. A. y L. A. Cavieres. 2010. Variación altitudinal de los atributos morfo-fisiológicos en dos especies de plantas alto-andinas y sus implicancias contra la fotoinhibición. Gayana Botanica 67(1): 1-11. DOI: https://doi.org/10.4067/s0717-66432010000100001
  40. Montaño-Arias, S. A., S. L. Camargo-Ricalde y C. P. Pérez-Olvera. 2013. Ecoanatomía de los elementos de vaso de la madera de cinco especies del género Mimosa (Leguminosae-Mimosoideae). Botanical Sciences 91(1): 1-10. DOI: https://doi.org/10.17129/botsci.398
  41. Montaño-Arias, S. A., S. L. Camargo-Ricalde y R. Grether. 2018. Complejos estomáticos de veinticuatro taxa de Mimosa (Leguminosae) presentes en México. Acta Botanica Mexicana 122: 97-107. DOI: https://doi.org/10.21829/abm122.2018.1260
  42. Morton, J. F. 1987. Barbados Cherry. In: Fruits of warm climates. Creative Resource Systems. Miami, USA. Pp. 204-207.
  43. Nitta, I., A. Kida, Y. Fujibayashi, H. Katayama y Y. Sugimura. 2006. Calcium carbonate deposition in a cell wall sac formed in mulberry idioblasts. Protoplasma 228(4): 201-208. DOI: https://doi.org/10.1007/s00709-006-0182-2
  44. Pereira, K. B. D. 2002. Micropropagacão e estudo morfo-anatômico do endocarpo, semente e plãntula de Byrsonima basiloba Juss. Dissertacao (Mestrado). Instituto de Ciências Biológicas, Universidade de Brasília. Brasília, Brasil. 103 pp.
  45. Ragonese, A. 1990. Caracteres xeromorfos foliares de Nassauvia lagascae (Compositae). Darwiniana 30(1/4): 1-10.
  46. Ramírez-Roa, A. y G. Varela-Hernández. 2011. Características anatómicas de hoja y flor con importancia taxonómica para la delimitación de cuatro especies en el género Moussonia (Gesneriaceae). Annals of the Missouri Botanical Garden 98: 413-429. DOI: https://doi.org/10.3417/2005150
  47. Rebollar, S., A. Quintanar y C. P. Pérez-Olvera. 1994. Estudio anatómico de la madera de Psidium sartorianum (Myrtaceae) y Cordia gerascanthus (Boraginaceae). Acta Botanica Mexicana 27: 89-97. DOI: https://doi.org/10.21829/abm27.1994.712
  48. Rodríguez, L. A., F. Guevara, H. Gómez y M. Fonseca. 2016. Anatomía foliar relacionada con la ruta fotosintética en árboles de café (Coffea arabica L., var. Caturra Rojo) expuestos a diferentes niveles de radiación solar en la Sierra Maestra, Granma, Cuba. Acta Agronómica 65(3): 248-254. DOI: https://doi.org/10.15446/acag.v65n3.46731
  49. Roth, I., T. Merida y H. Lindorf. 1986. Morfología y anatomía foliar de plantas de la Selva Nublada de Rancho Grande. Parque Nacional Henry Pittier. El ambiente físico, ecología general y anatomía vegetal. Fondo Editorial Acta Científica Venezolana. Caracas, Venezuela. Pp. 205-240.
  50. Ruzin, S. E. 1999. Plant Microtechnique and Microscopy. University Oxford. Vol. 1. New York, USA. 332 pp.
  51. Rzedowski, J. 2006. Vegetación de México. Limusa. México, D.F., México. 417 pp.
  52. Sack, L. y C. Scoffoni. 2013. Leaf venation: Structure, function, development, evolution, ecology and applications in the past, present and future. New Phytologist 198(4): 983-1000. DOI: https://doi.org/10.1111/nph.12253
  53. Schoch, P. G., C. Zinsou y M. Sibi. 1980. Dependence of the stomatal index on environmental factors during stomatal differentiation in leaves of Vigna sinensis L. Journal of Experimental Botany 31(124): 1211-1216.
  54. Siddique, S. A. y R. Ahmad. 1977. Epidermal studies of some Malpighiaceae. Plant Science 9: 37-39.
  55. Smith, W. K., T. C. Vogelmann, E. H. De Lucia, D. T. Bell y A. Shepherd. 1997. Leaf form and photosynthesis. BioScience 47(11): 785-793.
  56. Terashima, I., Y. T. Hanba, D. Tholen y Ü. Niinemets. 2011. Leaf functional anatomy in relation to photosynthesis. Plant Physiology 155(1): 108-116. DOI: https://doi.org/10.1104/pp.110.165472
  57. Torres, A. J. y M. Ch. Sanabria. 2011. Efecto del ambiente de desarrollo sobre la anatomía foliar de Cattleya jenmanii Rolfe y C. lueddemanniana Rchb. f. (Orchidaceae). Acta Botanica Venezuelica 34(1): 199-214.
  58. TROPICOS. 2017. Tropicos.org. Missouri Botanical Garden. http://www.tropicos.org (consultado agosto de 2017).
  59. Vega, A. S., M. A. Castro y W. R. Anderson. 2002. Occurrence and phylogenetic significance of latex in the Malpighiaceae. American Journal of Botany 89(11): 1725-1729.
  60. Villaseñor, J. L. 2010. El bosque húmedo de montaña en México y sus plantas vasculares: catálogo florístico-taxonómico. Comisión Nacional para el Conocimiento y Uso de la Biodiversidad. Universidad Nacional Autónoma de México. México, D.F., México. Pp. 28-40.
  61. Villaseñor, J. L. 2016. Checklist of the native vascular plants of Mexico. Revista Mexicana de Biodiversidad 87(3): 559-902. DOI: https://doi.org/10.1016/j.rmb.2016.06.017
  62. Yeats, T. H. y J. K. C. Rose. 2013. The formation and function of plant cuticles. Plant Physiology 163(1): 5-20. DOI: https://doi.org/10.1104/pp.113.222737
  63. Zamora-Natera, J. F. y T. Terrazas. 2012. Anatomía foliar y del peciolo de cuatro especies de Lupinus (Fabaceae). Revista Mexicana de Biodiversidad 83(3): 687-697. DOI: https://doi.org/10.7550/rmb.27264