Inhibición micelial de Trichoderma spp. (Hypocreaceae) aislado del cultivo de Pleurotus ostreatus (Pleurotaceae) con un extracto de Pycnoporus sp. (Polyporaceae)
DOI:
https://doi.org/10.21829/abm127.2020.1537Palabras clave:
control de enfermedades, hongos comestibles, sustrato lignocelulósicoResumen
Antecedentes y Objetivos: La producción de hongos comestibles se ve afectada por enfermedades bacterianas, fúngicas y virales, que a menudo causan grandes pérdidas. En la producción de hongos del género Pleurotus, los hongos de Trichoderma spp. representan un grave problema de contaminación y, aunque hay algunos compuestos químicos que controlan la infección, no son completamente seguros para el consumo humano. Como consecuencia, se están buscando alternativas a través de la biotecnología, como la que se presenta en este manuscrito.
Métodos: Cepas de hongos del género Trichoderma se aislaron del sustrato donde se cultivaba Pleurotus ostreatus. Estos se identificaron morfológicamente y
molecularmente; posteriormente se hicieron pruebas para inhibir el crecimiento de las cepas de Trichoderma tanto en agar como en paja de trigo, utilizando un extracto cetónico del cuerpo fructífero deshidratado de Pycnoporus sp.
Resultados clave: Se aislaron dos cepas de Trichoderma (T. pleuroti y T. atrobrunneum, perteneciente al clado de T. harzianum) del sustrato infectado obtenido en los módulos de producción de Pleurotus ostreatus ubicados en Tlaquitenango y Cuernavaca, en el estado de Morelos, México. También se evaluó el efecto de un extracto cetónico del cuerpo fructífero de Pycnoporus sp. En el crecimiento micelial de las cepas aisladas de Trichoderma, observando una disminución en la
tasa de crecimiento del micelio en la placa de Petri hasta en 72%, y en el sustrato lignocelulósico, tanto el crecimiento micelial como la esporulación se retrasaron hasta 10 días.
Conclusiones: El extracto de Pycnoporus sp. podría ser una alternativa para controlar la infección por Trichoderma spp. en cultivos de hongos del género Pleurotus.
Descargas
Citas
Al-Fatimi, M., G. Schröder, H. Kreisel and U. Lindequist. 2013. Biological activities of selected basidiomycetes from Yemen. Die Pharmazie-An International Journal of Pharmaceutical Scien¬ces 68(3): 221-226.
Beyer, D. M., P. J. Wuest and J. J. Kremser. 2000. Evaluation of epidemiological factors and mushroom substrate characteristics influencing the occurrence and development of Trichoderma green mold. In: Van Griensven, L. J. L. D. (ed.). Science and Cul¬tivation of Edible Fungi. CRC Press. Maastricht, Netherlands. Pp. 633-640.
Calonge, F. D. 2011. Hongos medicinales. Ed. Mundi-Prensa. Soria, España. 130 pp.
Chaverri, P., F. Branco-Rocha, W. Jaklitsch, R. Gazis, T. Degenkolb and G. J. Samuels. 2015. Systematics of the Trichoderma harzianum species complex and the re-identification of commercial biocontrol strains. Mycologia 107(3): 558-590. DOI: https://doi.org/10.3852/14-147
Chen, X., C. P. Romaine, M. D. Ospina-Giraldo and D. J. Royse. 1999. A polymerase chain reaction-based test for the identification of Trichoderma harzianum biotypes 2 and 4, responsible for the worldwide green mold epidemic in cultivated Agaricus bisporus. Applied Microbiology and Biotechnology 52(2): 246-250. DOI: https://doi.org/10.1007/s002530051516
Choi, I. Y., S. B. Hong and M. C. Yadav. 2003. Molecular and morphological characterization of green mold, Trichoderma spp. isolated from oyster mushrooms. Mycobiology 31(2): 74-80. DOI: https://doi.org/10.4489/MYCO.2003.31.2.074
Danesh, Y. R., E. M. Goltapeh and H. Rohani. 2000. Identification of Trichoderma species causing green mold in button mushroom farms, distribution and their relative abundance. In: Van Griensven L. J. L. D. (ed.). Science and Cultivation of Edible Fungi. CRC Press. Maastricht, Netherland. Pp. 653-659.
Díaz-Godínez, G., M. Téllez-Téllez, A. Rodríguez, V. Obregón-Barbosa, M. L. Acosta-Urdapilleta and E. Villegas. 2016. Enzymatic, an¬tioxidant, antimicrobial, and insecticidal activities of Pleurotus pulmonarius and Pycnoporus cinnabarinus grown separately in an airlift reactor. BioResources 11(2): 4186-4200. DOI: https://doi.org/10.15376/biores.11.2.4186-4200
Gea, F. J. 2009. First report of Trichoderma pleurotum on oyster mushroom crops in Spain. Journal of Plant Pathology 91: 504.
Goltapeh, E. M. and Y. R. Danesh. 2000. Studies on interaction between Trichoderma species and Agaricus bisporus mycelium. In: Van Griensven, L. J. L. D. (ed.). Science and Cultivation of Edible Fungi. CRC Press. Maastricht, Netherlands. Pp. 661-666.
Guzmán, G. 1994. Los hongos en la medicina tradicional de Mesoamérica y de México. Revista Iberoamericana de Micología 11(3): 81-85.
Guzmán, G. 2003. Fungi in the Maya Culture: Past, Present and Future. In: Gómez-Pompa, A., M. F. Allen, S. L. Fedick and J. J. Jiménez-Osorio (eds.). The Lowland Maya Area. Food Products Press. Nueva York, USA. Pp. 315-325.
Guzmán, G. 2008. Diversity and use of traditional Mexican medicinal fungi. A review. International Journal of Medicinal Mushrooms 10(3): 209-217. DOI: https://doi.org/10.1615/IntJMedMushr.v10.i3.20
Hatvani, L., P. Sabolić, S. Kocsubé, L. Kredics, D. Czifra, C. Vágvölgyl, J. Kaliterna, D. Ivić and I. Kosalec. 2012. The first report on mushroom green mould disease in Croatia. Arhiv za Higijenu Rada i Toksikologiju 63(4): 481-486. DOI: https://doi.org/10.2478/10004-1254-63-2012-2220
Hatvani, L., Z. Antal, L. Manczinger, A. Szekeres, I. S. Druzhinina, C. P. Kubicek, A. Nagy, E. Nagy, C. Vágvölgyi and L. Kredics. 2007. Green mould diseases of Agaricus and Pleurotus spp. are caused by related but phylogenetically different Trichoderma species. Phytopathology 97(4): 532-537. DOI: https://doi.org/10.1094/PHYTO-97-4-0532
Index Fungorum. 2019. Index Fungorum database. http://www.indexfungorum.org/Names/Names.asp (consulted March, 2019).
Kim, J. W., S. Kwon and H. J. Kang. 1995. Studies on the pathogenic Pseudomonas causing bacterial disease of cultivated mushroom in Korea. Korean Journal Plant Pathology 11: 353-360.
Kim, K. Y., G. J. Lee, M. G. Ha, T. H. Lee and J. D. Lee. 2000. Intrageneric relationships of Trichoderma based on internal transcribed spacers and 5.8S rDNA nucleotide sequences. Mycobiology 28(1): 11-16. DOI: https://doi.org/10.1080/12298093.2000.1 2015716
Komoń-Zelazowska, M., J. Bissett, D. Zafari, L. Hatvani, L. Manczinger, S. Woo, M. Lorito, L. Kredics, C. P. Kubicek and S. I. Druzhini¬na. 2007. Genetically closely related but phenotypically divergent Trichoderma species cause green mold disease in oyster mushroom farms worldwide. Applied and Environmental Microbiology 73(22): 7415-7426. DOI: https://doi.org/10.1128/AEM.01059-07
Kredics, L., L. Hatvani, L. Antal, L. Manczinger, S. I. Druzhinina, P. C. Kubicek, A. Szekeres, A. Nagy, C. Vágvölgyi and E. Nagy. 2006. Green mold disease of oyster mushroom in Hungary and Transylvania. Acta Microbiologica et Immunologica Hungarica 53: 306-307.
Kredics, L., S. Kocsubé, L. Nagy, M. Komoń-Zelazowska, L. Manczinger, E. Sajben, A. Nagy, C. Vágvölgyi, C. P. Kubicek, I. S. Druzhinina and L. Hatvani. 2009. Molecular identification of Trichoderma species associated with Pleurotus ostreatus and natural substrates of the oyster mushroom. Microbiology Letters 300(1): 58-67. DOI: https://doi.org/10.1111/j.1574- 6968.2009.01765.x
Marik, T., P. Urbán, C. Tyagi, A. Szekeres, B. Leitgeb, M. Vágvölgyi, L. Manczinger, I. S. Druzhinina, C. Vágvölgyi and L. Kredics. 2017. Diversity profile and dynamics of peptaibols produced by green mould Trichoderma species in interactions with their hosts Agaricus bisporus and Pleurotus ostreatus. Chemistry and Biodiversity 14(6): e1700033. DOI: https://doi.org/10.1002/cbdv.201700033
Martínez-Alfaro, M. A., E. Pérez-Silva and E. Aguirre-Acosta. 1983. Etnomicología y exploraciones micológicas en la Sierra Norte de Puebla. Scientia Fungorum 2(18): 51-63.
NCBI. 2019. National Center for Biotechnology Information. https://blast.ncbi.nlm.nih.gov (consulted March, 2019).
Oei, P. 1991. Manual on mushroom cultivation: techniques, species and opportunities for commercial application in developing countries. TOOL Publications. Wageningen, Netherlands. 249 pp.
Park, M. S., K. S. Bae and S. H. Yu. 2004. Molecular and morphological analysis of Trichoderma isolates associated with green mold epidemic of oyster mushroom in Korea. Journal of Huazhong Agricultural University 23(1): 157-164.
Park, M. S., K. S. Bae and S. H. Yu. 2006. Two new species of Trichoderma associated with green mold of oyster mushroom cultivation in Korea. Mycobiology 34(3): 111-113. DOI: https://doi.org/10.4489/MYCO.2006.34.3.111
Qiu, Z., X. Wu, J. Zhang and C. Huang. 2017. High temperature enhances the ability of Trichoderma asperellum to infect Pleurotus ostreatus mycelia. PloS ONE 12(10): e0187055. DOI: https://doi.org/10.1371/journal.pone.0187055
Reyes, Q. C. K. 2013. Propiedades antifúngicas diferenciadas de extractos vegetales como estrategia potencial para la prevención, manejo y control del moho verde (Trichoderma spp.): En el cultivo de los hongos comestibles (Lentinula, Pleurotus). Tesis de doctorado. Colegio de Posgraduados (COLPOS). Texcoco, México.
Royse, D. J. 2014. A global perspective on the high five: Agaricus, Pleurotus, Lentinula, Auricularia & Flammulina. In: Singh, M. (ed.). Proceedings of the 8th International Conference on Mushroom Biology and Mushroom Products (ICMBMP8). ICAR-Directorate of Mushroom Research. New Delhi, India. 639 pp.
Samuels, G. L. and H. Prakash. 2015. Trichoderma: identification and agricultural applications (No. LC-0862). The American Phytopathological Society. Minnesota USA. 196 pp.
Sharma, S. R. and B. Vijay. 1996. Yield loss in Pleurotus ostreatus spp. caused by Trichoderma viride. Mushroom Research 5: 19-22.
Sobal, C. M., A. P. Morales, Q. M. Bonilla, S. W. Martínez and D. Martínez-Carrera. 2016. Biotecnología, innovación y desarrollo en la cadena de valor con base en los recursos genéticos de los hongos comestibles, medicinales y funcionales. In: Martínez-Carrera, D. and J. J. Ramírez (eds.). Ciencia, Tecnología e Innovación en el Sistema Agroalimentario de México. Colegio de Postgraduados-Academia Mexicana de Ciencias-Consejo Nacional de Ciencia y Tecnología-Universidad Popular Autónoma del Estado de Puebla-Instituto de Micología Neotropical Aplicada Press. Texcoco, México. Pp. 761-779.
Sobieralski, K., M. Siwulski, M. Kommon-Żelazowska, L. Błaszczyk, I. Sas-Golak and D. Frużyńska-Jóźwiak. 2012. Impact of Trichoderma pleurotum and T. pleuroticola isolates on yielding of Pleurotus ostreatus (FR.) Kumm. Journal of Plant Protection Research 52(1): 165-168. DOI: https://doi.org/10.2478/ v10045-012-0025-4
Soković, M. and L. J. van Griensven. 2006. Antimicrobial activity of essential oils and their components against the three major pathogens of the cultivated button mushroom, Agaricus bisporus. European Journal of Plant Pathology 116(3): 211-224. DOI: https://doi.org/10.1007/s10658-006-9053-0
StatSoft Inc. 2004. STATISTICA (data analysis software system) version 7.0. Tulsa, USA. https://statistica.software.informer.com/7.0/ (consulted March, 2019).
Téllez-Téllez, M., G. Díaz-Godínez and C. Sánchez. 2003. Physiology of colony Pleurotus pulmonarius grown on media overlaid with a cellophane membrane. Applied Microbiology and Biotechnology 63(2): 212-216. DOI: https://doi.org/10.1007/s00253-003-1387-3
Teoh, Y. P., M. M. Don and S. Ujang. 2011. Media selection for mycelia growth, antifungal activity against wood-degrading fungi, and GC-MS study by Pycnoporus sanguineus. BioResources 6(3): 2719-2731. DOI: https://doi.org/10.15376/biores.6.3.2719-2731
Wang, G., X. Cao, X. Ma, M. Guo, C. Liu, L. Yan and Y. Bian. 2016. Diversity and effect of Trichoderma spp. associated with green mold disease on Lentinula edodes in China. Microbiology Open 5(4): 709-718. DOI: https://doi.org/10.1002/mbo3.364
Woo, S. L., P. Di Benedetto, M. Senatore, K. Abadi, S. Gigante, I. Soriente, S. Ferraioli, F. Scala and M. Lorito. 2004. Identification and characterization of Trichoderma species aggressive to Pleurotus in Italy. Journal of Zhejiang University Agriculture and Life Sciences 30: 469-470.
Zehr, E. I. 1978. Methods for evaluating plant fungicides, nematicides, and bactericides. Prepared jointly by the American Phytopathological Society and the Society of Nematologists. American Phytopathological Society. St. Paul, Minnesota, USA. 141 pp.
Descargas
Publicado
Cómo citar
-
Resumen4868
-
EPUB 61
-
PDF 303
-
XML 31
Número
Sección
Licencia
Derechos de autor 2019 Acta Botanica Mexicana
Esta obra está bajo una licencia internacional Creative Commons Atribución-NoComercial 4.0.
Los autores/as que publiquen en esta revista aceptan las siguientes condiciones:
De acuerdo con la legislación de derechos de autor, Acta Botanica Mexicana reconoce y respeta el derecho moral de los autores, así como la titularidad del derecho patrimonial, el cual será cedido a la revista para su difusión en acceso abierto. Acta Botanica Mexicana no realiza cargos a los autores por enviar y procesar artículos para su publicación.
Todos los textos publicados por Acta Botanica Mexicana –sin excepción– se distribuyen amparados bajo la licencia Creative Commons 4.0 Atribución-No Comercial (CC BY-NC 4.0 Internacional), que permite a terceros utilizar lo publicado siempre que mencionen la autoría del trabajo y a la primera publicación en esta revista.
Los autores/as pueden realizar otros acuerdos contractuales independientes y adicionales para la distribución no exclusiva de la versión del artículo publicado en Acta Botanica Mexicana (por ejemplo incluirlo en un repositorio institucional o publicarlo en un libro) siempre que indiquen claramente que el trabajo se publicó por primera vez en Acta Botanica Mexicana.
Para todo lo anterior, el corrector de originales le solicitará junto con la revisión de galeras, que expida su Carta-Cesión de la Propiedad de los Derechos de la primera publicación debidamente requisitado y firmado por el autor(es). Esta carta se debe enviar por correo electrónico en archivo pdf al correo: acta.botanica@inecol.mx (Carta-Cesión de Propiedad de Derechos de Autor).
