Crecimiento y fisiología en plantas de Pinus ayacahuite (Pinaceae) inoculado con Suillus placidus (Suillaceae) y una bacteria promotora del crecimiento vegetal
DOI:
https://doi.org/10.21829/abm132.2025.2473Palabras clave:
biotecnología, calidad de planta, hongos ectomicorrízicos comestibles, producción de planta en invernadero, Pseudomonas azotoformans, reforestacionesResumen
Antecedentes y Objetivos: Pinus es el género de coníferas con mayor diversidad en México. Sus especies establecen interacciones simbióticas mutualistas en sus raíces con hongos ectomicorrízicos y bacterias que promueven el crecimiento vegetal. Estas simbiosis contribuyen a un mayor crecimiento, calidad fisiológica de las plantas y absorción nutrimental. En la presente investigación, se evaluó el efecto de la inoculación con un hongo ectomicorrízico comestible en combinación con una cepa bacteriana, en términos de crecimiento, fisiología y contenido nutrimental en plantas de Pinus ayacahuite.
Métodos: Las plantas de P. ayacahuite se inocularon con el hongo Suillus placidus y la bacteria promotora del crecimiento Pseudomonas azotoformans en invernadero. Después de 570 días de la inoculación se evaluó el crecimiento (altura y diámetro), variables fisiológicas (tasa fotosintética, contenido de clorofilas y transpiración) y contenido de macro y micronutrientes en las plantas.
Resultados clave: El crecimiento en altura y diámetro fue casi doble en las plantas inoculadas únicamente con el hongo ectomicorrízico, así como en aquellas inoculadas en combinación con la bacteria en comparación con plantas no inoculadas. Asimismo, el peso seco de la biomasa aérea y radical fue hasta cinco veces superior al de las plantas no inoculadas. Las plantas inoculadas con el hongo y la bacteria mostraron incrementos significativos en la tasa fotosintética, transpiración, contenido de pigmentos fotosintéticos (clorofilas a, b y carotenos), así como en las concentraciones de macro y micronutrientes (N, K, Ca, Mg, Fe y Mn), en comparación con las plantas no inoculadas.
Conclusiones: Este trabajo revela el efecto positivo que tuvo S. placidus, ya sea solo o en combinación con la bacteria P. azotoformans, en el mejoramiento del crecimiento, fisiología y contenido nutrimental de P. ayacahuite, en invernadero. Esto demuestra el potencial biotecnológico de inoculación de los microorganismos evaluados para la producción de plantas de P. ayacahuite de alta calidad en invernadero.
Descargas
Citas
Agerer, R. 1994. Characterization of ectomycorrhizae. In: Norris, J. R., D. J. Read y A. K. Varma (eds.). Techniques for mycorrhizal research. Academic Press. London, UK. Pp. 25-73.
Agerer, R. y G. Rambold. 2004. DEEMY- An information system for characterization and determination of ectomycorrhizae. Munich, Germany. http://www.deemy.de (consultado febrero de 2022).
Afkhami, M. E., B. K. Almeida, D. J. Hernandez, K. N. Kiesewetter, y D. P. Revillini. 2020. Tripartite mutualisms as models for understanding plant-microbial interactions. Current Opinion in Plant Biology 56: 28-36. DOI: https://doi.org/10.1016/j.pbi.2020.02.003. DOI: https://doi.org/10.1016/j.pbi.2020.02.003
Ahangar, M. A., G. H. Dar y Z. A. Bhat. 2012. Growth response and nutrient uptake of blue pine (Pinus wallichiana) seedlings inoculated with rhizosphere microorganisms under temperate nursery conditions. Annals of Forest Research 55(2): 217-227. DOI: https://doi.org/10.15287/afr.2012.62 DOI: https://doi.org/10.15287/afr.2012.62
Allen, S. E., H. M. Grimshaw, J. A. Parkinson y C. Quarmbym. 1997. Chemical analysis of ecological materials. Blackwell Scientific Publications. Oxford, USA. 85 pp.
Alori, E. T., B. R. Glick y O. O. Babalola. 2017. Microbial phosphorus solubilization and its potential for use in sustainable agriculture. Frontiers in Microbiology 8: 971. DOI: https://doi.org/10.3389/fmicb.2017.00971 DOI: https://doi.org/10.3389/fmicb.2017.00971
Alves, L., V. L. Oliveira y G. N. Silva Filho. 2010. Utilization of rocks and ectomycorrhizal fungi to promote growth of eucalypt. Brazilian Journal of Microbiology 41(3): 676-684. DOI: https://doi.org/10.1590/S1517-83822010000300018 DOI: https://doi.org/10.1590/S1517-83822010000300018
Araújo, G. C., N. R. Sousa, M. A. Ramos, A. L. Vega y P. M. L. Castro. 2018. Performance of Quercus suber L. at nursery stage-application of two bio-inoculants under two distinct environments. Annals of Forest Science 75(1): 1-12. DOI: https://doi.org/10.1007/s13595-018-0700-3 DOI: https://doi.org/10.1007/s13595-018-0700-3
Arteaga-León, C., J. Pérez-Moreno, D. Espinosa-Victoria, J. J. Almaraz-Suárez, H. Silva Rojas y A. Delgado-Alvarado. 2018. Ectomycorrhizal inoculation with edible fungi increases plant growth and nutrient contents of Pinus ayacahuite. Revista Mexicana de Biodiversidad 89(4): 1089-1099. DOI: https://doi.org/10.22201/ib.20078706e.2018.4.2235 DOI: https://doi.org/10.22201/ib.20078706e.2018.4.2235
Barragán-Soriano, J. L., J. Pérez-Moreno, J. J. Almaraz-Suárez, M. G. Carcaño-Montiel y K. I. Medrano-Ortiz. 2018. Inoculation with an edible ectomycorrhizal fungus and bacteria increases growth and improves the physiological quality of Pinus montezumae Lamb. Revista Chapingo, Serie Ciencias Forestales y del Ambiente 24(1): 5-16. DOI: https://doi.org/10.5154/r.rchscfa.2017.01.010 DOI: https://doi.org/10.5154/r.rchscfa.2017.01.010
Barragán-Soriano, J. L., J. Pérez-Moreno, J. J. Almaraz-Suárez, M. G. Carcaño-Montiel, J. Delgadillo-Martínez, V. M. Cetina-Alcalá y G. Mata. 2022. Coinoculación de Pinus montezumae (Pinaceae) con un hongo comestible ectomicorrízico y bacterias promotoras de crecimiento vegetal. Acta Botanica Mexicana 129: e2024. DOI: https://doi.org/10.21829/abm129.2022.2024 DOI: https://doi.org/10.21829/abm129.2022.2024
Berrios, L., J. Yeam, L. Holm, W. Robinson, P. T. Pellitier, M. L. Chin, T. W. Henkel y K. G. Peay. 2023. Positive interactions between mycorrhizal fungi and bacteria are widespread and benefit plant growth. Current Biology 33(14): 2878-2887. DOI: https://doi.org/10.1016/j.cub.2023.06.010 DOI: https://doi.org/10.1016/j.cub.2023.06.010
Bremmer, J. M. 1975. Total Nitrogen. In: Black, C. A. (ed.). Methods of Soil Analysis. Agronomy Part 2. American Society of Agronomy. Madison, USA. Pp. 1149-1178. DOI: https://doi.org/10.2134/agronmonogr9.2.c32
Brundrett, M., C. 2017. Global diversity and importance of mycorrhizal and nonmycorrhizal plants. In: Tedersoo, L. (ed.). Biogeography of Mycorrhizal Symbiosis. Ecological Studies, Vol. 230. Springer. Cham, Switzerland. Pp. 533-556. DOI: https://doi.org/10.1007/978-3-319-56363-3_21 DOI: https://doi.org/10.1007/978-3-319-56363-3_21
CONAFOR. 2013a. Árboles de Navidad. Secretaria del Medio Ambiente y Recursos Naturales - Comisión Nacional Forestal (CONAFOR). Jalisco, México. Pp. 9.
CONAFOR. 2013b. Comprar árboles de Navidad mexicanos mejora la economía de productores locales y el medio ambiente. Comisión Nacional Forestal (CONAFOR), Secretaría de Medio Ambiente y Recursos Naturales (SEMARNAT). Boletín 163: 2.
de Guadalupe Farfán-Vázquez, E., J. Jaso-Mata, J. López-Upton, J. J. Vargas-Hernández y C. Ramírez-Herrera. 2002. Parámetros genéticos y eficiencia de la selección temprana en Pinus ayacahuite Ehren. var. ayacahuite. Revista Fitotecnia Mexicana 25(3): 239-239. DOI: https://doi.org/10.35196/rfm.2002.3.239 DOI: https://doi.org/10.35196/rfm.2002.3.239
Dixon, L., B. Bellinger y A. H. Carter. 2023. A gravimetric method to monitor transpiration under water stress conditions in wheat. The Plant Phenome Journal 6(1): e20078. DOI: https://doi.org/10.1002/ppj2.20078 DOI: https://doi.org/10.1002/ppj2.20078
Domínguez-Nuñez, J. A., M. Medina, M. Berrocal-Lobo, A. Anriquez y A. Albanesi. 2015. The combined effects of Pseudomonas fluorescens CECT 844 and the black truffle co-inoculation on Pinus nigra seedlings. iForest-Biogeosciences and Forestry 8(5): 624. DOI: https://doi.org/10.3832/ifor1334-007 DOI: https://doi.org/10.3832/ifor1334-007
Dwyer, L. M., D. W. Stewart y D. Balchin. 1987. Accurately monitoring and maintaining soil water in greenhouse containers. Canadian Agricultural Engineering 29: 89-91.
FAO. 2010. Global Forest resources assessment 2010. Food and Agriculture Organization of the United Nations (FAO). Rome, Italy. Pp. 36.
FAO. 2013. Sustainable Christmas trees give German forests a boost. Food and Agriculture Organization (FAO)-Forestry Department. Infosylva Forestry News Clippings 24: 15-17. DOI: https://doi.org/10.1093/yiel/yvu027
FAO. 2020. El estado de los bosques del mundo 2020. Los bosques la biodiversidad y las personas. Organización de las Naciones Unidas para la Alimentación y la Agricultura (FAO). Roma. Italia. Pp. 197.
Frey-Klett, P., J. Garbaye y M. Tarkka. 2007. The mycorrhiza helper revisited. New Phytologist 176(1): 22-36. DOI: https://doi.org/10.1111/j.1469-8137.2007.02191.x DOI: https://doi.org/10.1111/j.1469-8137.2007.02191.x
Garibay-Orijel, R., E. Morales-Marañon, M. Domínguez-Gutiérrez y A. Flores-García. 2013. Caracterización morfológica y genética de las ectomicorrizas formadas entre Pinus montezumae y los hongos presentes en los bancos de esporas en la Faja Volcánica Transmexicana. Revista Mexicana de Biodiversidad 84(1): 153-169. DOI: https://doi.org/10.7550/rmb.29839 DOI: https://doi.org/10.7550/rmb.29839
Gernandt, D. S. y J. A. Pérez de la Rosa. 2014. Biodiversidad de Pinophyta (coníferas) en México. Revista Mexicana de Biodiversidad 85: 126-133. DOI: https://doi.org/10.7550/rmb.32195 DOI: https://doi.org/10.7550/rmb.32195
Heras-Marcial, M., A. Aldrete, A. Gómez-Guerrero y D. A. Rodríguez-Trejo. 2023. Influence of fertilization on survival and growth of Pinus patula Schiede ex Schltdl. & Cham. under nursery and field conditions. Revista Chapingo Serie Ciencias Forestales y del Ambiente 29(1): 3-14. DOI: https://doi.org/10.5154/r.rchscfa.2022.03.019 DOI: https://doi.org/10.5154/r.rchscfa.2022.03.019
Jefwa, J. M., S. Okoth, D. Baraza, M. J. Korir y M. A. Sakha. 2025. Ectomycorrhizal fungi as biofertilizers in forestry restoration in Africa. In: Azeem, A. M. A., M. Gryzenhout, S. Ghosh y T. A. Mohammed (eds.). Forest Fungi. Academic Press. Cambridge, USA. Pp. 463-478. DOI: https://doi.org/10.1016/B978-0-443-18870-1.00013-5 DOI: https://doi.org/10.1016/B978-0-443-18870-1.00013-5
Khan, M. S., A. Zaidi y P. A. Wani. 2007. Role of phosphate-solubilizing microorganisms in sustainable agriculture a review. Agronomy for Sustainable Development 27(1): 2943. DOI: https://doi.org/10.1007/978-90-481-2666-8_34 DOI: https://doi.org/10.1051/agro:2006011
Lichtenthaler, H. K. 1987. Chlorophyll and carotenoids: pigments of photosynthetic biomembranes. Methods in Enzymology 148: 350-382. DOI: https://doi.org/10.1016/0076-6879(87)48036-1 DOI: https://doi.org/10.1016/0076-6879(87)48036-1
López-Gutiérrez, A., J. Pérez-Moreno, F. Hernández-Santiago, E. Uscanga-Mortera, A. García-Esteva, V. M. Cetina-Alcalá y B. Xoconostle-Cázares. 2018. Nutrient mobilization, growth and field survival of Pinus pringlei inoculated with three ectomycorrhizal mushrooms. Botanical Sciences 96(2): 286-304. DOI: https://doi.org/10.17129/botsci.1239 DOI: https://doi.org/10.17129/botsci.1239
Mangeot-Peter, L., T. J. Tschaplinski, N. L. Engle, C. Veneault-Fourrey, F. Martin y A. Deveau. 2020. Impacts of soil microbiome variations on root colonization by fungi and bacteria and on the metabolome of Populus tremula × alba. Phytobiomes Journal 4(2): 142-155. DOI: https://doi.org/10.1094/PBIOMES-08-19-0042-R DOI: https://doi.org/10.1094/PBIOMES-08-19-0042-R
Martínez-Reyes, M., J. Pérez-Moreno, L. Villarreal-Ruiz, R. Ferrera-Cerrato, B. Xoconostle-Cázares, J. J. Vargas-Hernández y M. Honrubia-García. 2012. Crecimiento y contenido nutrimental de Pinus greggii Engelm. inoculado con el hongo comestible ectomicorrízico Hebeloma mesophaeum (Pers.) Quél. Revista Chapingo Serie Ciencias Forestales y del Ambiente 18(2): 183-192. DOI: https://doi.org/10.5154/r.rchscfa.2010.11.112 DOI: https://doi.org/10.5154/r.rchscfa.2010.11.112
Mosimann, C., T. Oberhänsli, D. Ziegler, D. Nassal, E. Kandeler, T. Boller y C. Thonar. 2017. Tracing of two Pseudomonas strains in the root and rhizoplane of maize, as related to their plant growth-promoting effect in contrasting soils. Frontiers in Microbiology 7: 2150. DOI: https://doi.org/10.3389/fmicb.2016.02150 DOI: https://doi.org/10.3389/fmicb.2016.02150
Musálem, M. A. y A. Ramírez-Luis. 2003. Monografía de Pinus ayacahuite var. veitchii Shaw. Instituto Nacional de Investigaciones Forestales y Pecuarias. México, D.F., México. Pp. 64-65.
Pecl, G. T., M. B. Araújo, J. D. Bell, J. Blanchard, T. C. Bonebrake, I. C. Chen y L. Falconi. 2017. Biodiversity redistribution under climate change: Impacts on ecosystems and human well-being. Science 355(6332): eaai9214. DOI: https://doi.org/10.1126/science.aai9214 DOI: https://doi.org/10.1126/science.aai9214
Pérez de la Rosa A. P. y D. S. Gernandt. 2017. Pinus vallartensis (Pinaceae), a new species from western Jalisco, Mexico. Phytotaxa 331(2): 233-242. DOI: https://doi.org/10.11646/phytotaxa.331.2.7 DOI: https://doi.org/10.11646/phytotaxa.331.2.7
Pérez-Moreno, J., M. Martínez-Reyes, F. Hernández-Santiago y I. Ortiz-Lopez. 2020. Climate Change, Biotechnology, and Mexican Neotropical Edible Ectomycorrhizal Mushrooms. In: Pérez-Moreno, J., A. Guerin-Laguette, R. Flores-Arzú y Y. Fu-Qiang (eds.). Mushrooms, Humans and Nature in a Changing World Perspectives from Ecological, Agricultural and Social Sciences. Springer. Cham, Switzerland. Pp. 61-69. DOI: https://doi.org/10.1007/978-3-030-37378-8_3 DOI: https://doi.org/10.1007/978-3-030-37378-8_3
Pérez-Moreno, J., P. E. Mortimer, J. Xu, S. C. Karunarathna y H. Li. 2021. Global perspectives on the ecological, cultural and socioeconomic relevance of wild edible fungi. Studies in Fungi 6(1): 408-424. DOI: https://doi.org/10.5943/sif/6/1/31 DOI: https://doi.org/10.5943/sif/6/1/31
Pérez-Pazos, E., A. Certano, J. Gagne, R. Lebeuf, N. Siegel, N. Nguyen y P. G. Kennedy. 2021. The slippery nature of ectomycorrhizal host specificity: Suillus fungi associated with novel pinoid (Picea) and abietoid (Abies) hosts. Mycology 113(5): 891-901. DOI: https://doi.org/10.1080/00275514.2021.1921525 DOI: https://doi.org/10.1080/00275514.2021.1921525
Pickles, B. J. y S. W. Simard. 2017. Mycorrhizal networks and forest resilience to drought. In: Johnson, N. C., C. Gehring y J. Jansa (eds.). Mycorrhizal mediation of Soil-Fertility, structure, and carbon storage, cap. 18. Elsevier. Ámsterdam, Netherlands. Pp. 319-339. DOI: https://doi.org/10.1016/B978-0-12-804312-7.00018-8 DOI: https://doi.org/10.1016/B978-0-12-804312-7.00018-8
Pineda-Mendoza, D. Y., J. J. Almaraz, M. E. Lara-Hernández, R. Arteaga-Garibay y H. V. Silva-Rojas. 2019. Cepas de bacterias aisladas de esporomas de hongos ectomicorrízicos promueven el crecimiento vegetal. ITEA-Información Técnica Económica Agraria 115(1): 4-17. DOI: https://doi.org/10.12706/itea.2018.027 DOI: https://doi.org/10.12706/itea.2018.027
Prieto, R. J. A., J. L. Garcia, M. Mejía, S. Huchin y L. Aguilar. 2009. Producción de planta del género Pinus en vivero en clima templado frio, Publicación especial N°28. Instituto Nacional de Investigaciones Forestales, Agrícolas y Pecuarias, Centro de Investigación Regional Norte Centro, Campo experimental del Valle de Guadiana. Durango, México. Pp. 46.
Rainer, G., R. Kuhnert, M. Unterholzer, P. Dresch, A. Gruber y U. Peintner. 2015. Host-Specialist Dominated Ectomycorrhizal Communities of Pinus cembra are not Affected by Temperature Manipulation. Journal of Fungi (Basel) 1(1): 55-75. DOI: https://doi.org/10.3390/jof1010055 DOI: https://doi.org/10.3390/jof1010055
Ramírez-Gama, R. N., O. C. Velázquez-Madrazo y B. Luna Millán. 2011. Manual de Prácticas de Microbiología General. Facultad de Química, Universidad Nacional Autónoma de México. Cd. Mx., México. 300 pp.
Ramírez-Mendoza, R., R. Ángeles-Argáiz, L. F. Aguirre-Beltrán, J. J. Almaraz-Suárez, D. Hernández-Oaxaca, I. Ortiz-Lopez y J. Pérez-Moreno. 2023. Whole-Genome sequence of Pseudomonas yamanorum OLsAu1 isolated from the edible wild ectomycorrhizal mushroom Lactarius sp. Section Deliciosi. Microbiology Resource Announcements. 12: e00843-23. DOI: https://doi.org/10.1128/MRA.00843-23 DOI: https://doi.org/10.1128/MRA.00843-23
Ramos-Dorantes, D. B., J. L. Villaseñor, E. Ortiz y S. D. Gernandt. 2017. Biodiversity, distribution, and conservation status of Pinaceae in Puebla, Mexico. Revista Mexicana de Biodiversity 88(1): 215-223. DOI: https://doi.org/10.1016/j.rmb.2017.01.028 DOI: https://doi.org/10.1016/j.rmb.2017.01.028
Rinaldi, A. C., O. Comadini y T. W. Kuyper. 2008. Ectomycorrhizal fungal diversity: Separating the wheat from the chaff. Fungal Diversity 33: 1-45. http://www.fungaldiversity.org/fdp/sfdp/33-1.pdf (consultado septiembre de 2025).
Rosete-Vergés, F. A., J. L. Pérez-Damián, M. Villalobos-Delgado, E. N. Navarro-Salas, E. Salinas-Chávez y R. Remond-Noa. 2014. El avance de la deforestación en México 1976-2007. Madera y Bosques 20(1): 21-35. DOI: https://doi.org/10.21829/myb.2014.201173 DOI: https://doi.org/10.21829/myb.2014.201173
Sáenz-Reyes, J., H. J. Muñoz-Flores, C. M. A. Pérez, A. Rueda-Sánchez y J. Hernández Ramos. 2014. Calidad de planta de tres especies de pino en el vivero” Morelia”, estado de Michoacán. Revista Mexicana de Ciencias Forestales 5(26): 98-111. DOI: https://doi.org/10.29298/rmcf.v5i26.293 DOI: https://doi.org/10.29298/rmcf.v5i26.293
SAS. 2004. STAT ver. 9.00 User’s Guide. SAS Institute. Cary, USA. 880 pp.
Sharma-Serma, B., Z. Sayyed-Riyaz, H. Trivedi-Mrugesh y A. Gobi-Thivakaran. 2013. Phosphate solubilizing microbes: sustainable approach for managing phosphorus deficiency in agricultural soils. SpringerPlus 2: 587. DOI: https://doi.org/10.1186/2193-1801-2-587 DOI: https://doi.org/10.1186/2193-1801-2-587
Singer, R. 1975. Agaricales in Modern Taxonomy. 3rd. ed. J. Cramer. Vaduz, Liechtenstein. 912 pp. DOI: https://doi.org/10.1127/nova.hedwigia/26/1975/435
Smith, S. E. y D. J. Read. 2008. Mycorrhizal symbiosis. 3rd. ed. Academic Press. New York, USA. 787 pp.
Sosa-Rodríguez, S. F. 2015. Política del cambio climático en México: avances, obstáculos y retos. Realidad, Retos y Espacios, Revista Internacional de Estadística y Geografía: 6(2): 18.
Sousa, R. N., R. A. Franco, A. M. Ramos, S. R. Oliveira y L. M. P. Castro. 2015. The response of Betula pubescens to inoculation with an ectomycorrhizal fungus and a plant growth promoting bacterium is substrate-dependent. Ecological Engineering 81: 439-443. DOI: https://doi.org/10.1016/j.ecoleng.2015.04.024 DOI: https://doi.org/10.1016/j.ecoleng.2015.04.024
Sritongon, N., S. Boonlue, W. Mongkolthanaruk, S. Jogloy y N. Riddech. 2023. The combination of multiple plant growth promotion and hydrolytic enzyme producing rhizobacteria and their effect on Jerusalem artichoke growth improvement. Scientific Reports 13(1): 5917. DOI: https://doi.org/10.1038/s41598-023-33099-x DOI: https://doi.org/10.1038/s41598-023-33099-x
Szuba, A., L. Marczak, L. Karliński, J. Mucha y D. Tomaszewski. 2019. Regulation of the leaf proteome by inoculation of Populus × canescens with two Paxillus involutus isolates differing in root colonization rates. Mycorrhiza 29: 503-517. DOI: https://doi.org/10.1007/s00572-019-00910-5 DOI: https://doi.org/10.1007/s00572-019-00910-5
Thomas, P. W y S. A. Jump. 2023. Edible fungi crops through mycoforestry, potential for carbon negative food production and mitigation of food and forestry conflicts. Proceedings of the National Academy of Sciences 120(12): e2220079120. DOI: https://doi.org/10.1073/pnas.2220079120 DOI: https://doi.org/10.1073/pnas.2220079120
Wang, J., H. Zhang y J. Gao. 2021. Effects of ectomycorrhizal fungi (Suillus variegatus) on the growth, hydraulic function, and non-structural carbohydrates of Pinus tabulaeformis under drought stress. BMC Plant Biology 21: 171. DOI: https://doi.org/10.1186/s12870-021-02945-3 DOI: https://doi.org/10.1186/s12870-021-02945-3
Wang, Y. y I. R. Hall. 2004. Edible ectomycorrhizal mushrooms: challenges and achievements. Canadian Journal of Botany 82(8): 1063-1073. DOI: https://doi.org/10.1139/b04-051 DOI: https://doi.org/10.1139/b04-051
Wang, Y. H., L. L. Hou, X. Q. Wu, M. L. Zhu, Y. Dai y Y. J. Zhao. 2022. Mycorrhiza helper bacterium Bacillus pumilus HR10 improves growth and nutritional status of Pinus thunbergii by promoting mycorrhizal proliferation. Tree Physiology 42(4): 907-918. DOI: https://doi.org/10.1093/treephys/tpab139 DOI: https://doi.org/10.1093/treephys/tpab139
Wu, X. Q., L. L. Hou, J. M. Sheng, J. H. Ren, L. Zheng, D. Chen y J. R. Ye. 2012. Effects of ectomycorrhizal fungus Boletus edulis and mycorrhiza helper Bacillus cereus on the growth and nutrient uptake by Pinus thunbergii. Biology and Fertility of Soils 48(4): 385-391. DOI: https://doi.org/10.1007/s00374-011-0638-1 DOI: https://doi.org/10.1007/s00374-011-0638-1
Xu, H., M. Kemppainen, W. El Kayal, S. H. Lee, A. G. Pardo, J. E. Cooke y J. J. Zwiazek. 2015. Overexpression of Laccaria bicolor aquaporin JQ585595 alters root water transport properties in ectomycorrhizal white spruce (Picea glauca) seedlings. New Phytologist 205(2): 757-770. DOI: https://doi.org/10.1111/nph.13098 DOI: https://doi.org/10.1111/nph.13098
Zhang, Z. X. 1986. Determination of chlorophyll content of plants - acetone and ethanol mixture method. Liaoning Agricultural Science 3: 26-28.
Zhu, L., Z. Fu, J. Zhang, J. Wang, J. Lin, Z. Yuan, X. Cheng y D. Chu. 2018. Effects of mycorrhizal fungi on photosynthetic characteristics of Zelkova serrata Thunb. Journal of Nanjing Forestry University 42: 121-127. DOI: https://doi.org/10.3969/j.issn.1000-2006.201801031
Publicado
Cómo citar
-
Resumen192
-
PDF50
-
EPUB7
Número
Sección
Licencia

Esta obra está bajo una licencia internacional Creative Commons Atribución-NoComercial 4.0.
Los autores/as que publiquen en esta revista aceptan las siguientes condiciones:
De acuerdo con la legislación de derechos de autor, Acta Botanica Mexicana reconoce y respeta el derecho moral de los autores, así como la titularidad del derecho patrimonial, el cual será cedido a la revista para su difusión en acceso abierto. Acta Botanica Mexicana no realiza cargos a los autores por enviar y procesar artículos para su publicación.
Todos los textos publicados por Acta Botanica Mexicana –sin excepción– se distribuyen amparados bajo la licencia Creative Commons 4.0 Atribución-No Comercial (CC BY-NC 4.0 Internacional), que permite a terceros utilizar lo publicado siempre que mencionen la autoría del trabajo y a la primera publicación en esta revista.
Los autores/as pueden realizar otros acuerdos contractuales independientes y adicionales para la distribución no exclusiva de la versión del artículo publicado en Acta Botanica Mexicana (por ejemplo incluirlo en un repositorio institucional o publicarlo en un libro) siempre que indiquen claramente que el trabajo se publicó por primera vez en Acta Botanica Mexicana.
Para todo lo anterior, el corrector de originales le solicitará junto con la revisión de galeras, que expida su Carta-Cesión de la Propiedad de los Derechos de la primera publicación debidamente requisitado y firmado por el autor(es). Esta carta se debe enviar por correo electrónico en archivo pdf al correo: acta.botanica@inecol.mx (Carta-Cesión de Propiedad de Derechos de Autor).

